LAPORAN LENGKAP PRAKTIKUM
FISIOLOGI TUMBUHAN
Oleh
I WAYAN PERRY PRAMANA
E
281 10 015
PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS TADULAKO
2011
LAPORAN LENGKAP PRAKTIKUM
FISIOLOGI TUMBUHAN
Disusun Sebagai Salah Satu Syarat untuk
Menyelesaikan Mata Kuliah Fisiologi Tumbuhan
Oleh
I WAYAN PERRY PRAMANA
E
281 10 015
PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS TADULAKO
2011
HALAMAN PENGESAHAN
Judul
: Laporan Lengkap Praktikum Fisiologi Tumbuhan
Tujuan : Untuk Mengetahui
potensial air
pada umbi kentang, mengetahui pengaruh faktor lingkungan pada laju transpirasi tumbuhan, mempelajari pengaruh
turgor terhadap mekanisme membuka dan menutupnya stomata, mengetahui
pengaruh pada larutan pada proses imbibisi pada biji,. mengetahui pengaruh berbagai zat pengatur tumbuh pada
perkecambahan biji. mengetahui pengaruh Auksin (IAA) terhadap perkecambahan biji, menentukan kadar
klorofil daun dengan pengukuran menggunakan spektrofotometer, mengetahui jenis-jenis
pigmen pada suatu daun tumbuhan, ,
Nama : I
Wayan Perry Pramana
Stambuk : E 281 10 015
Program studi : Agroteknologi
Fakultas : Pertanian
Universitas : Tadulako
Palu, November 2011
Menyetujui
Koordinator Asisten Asistan Penangung Jawab
Muhamad Ridwan Muhamad Ridwan
E 281 08
034 E 281 08 034
UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis menyadari tanpa
bantuan dari semua pihak laporan Fisiologi Tumbuhan yang bentuknya sederhana
ini belum sesuai dengan apa yang di
harapkan. Oleh karena itu saya selaku
penulis mengucapkan banyak terima kasih kepada Allah SWT yang telah memberikan
Kekuatan, kesehatan mulai dari melaksanakan praktikum sampai tahap penyusunan
laporan lengkap.
Terima kasih pula saya
ucapkan kepada Dosen mata kuliah Fisiologi Tumbuhan yang telah banyak membantu
dan membimbing kita dalam matakuliah Fisiologi Tumbuhan . Kakak-kakak Asisten selaku koordinator
asisten serta asisten penangung jawab, yang telah membimbing kami selama
praktikum berlangsung, Teman-teman praktikum yang ikut membantu selama
praktikum berlangsung sampai penyusunan laporan sementara sampai laporan
lengkap. Kedua orang tua saya yang telah
banyak memberikan bantuan baik moral maupun material sehingga penulis dapat
menyelesaikan laporan Fisiologi Tumbuhan dengan sebaik baik mungkin. Mudah-mudahan semua bantuan ini dapat bermanfaat
buat saya selaku penyusun laporan lengkap Fisiologi Tumbuhan.
Palu,
November 2011
Penyusun
KATA
PENGANTAR
Puji syukur senantiasa penulis panjatkan
kehadirat Allah SWT atas limpahan rahmat serta karunia-Nya kepada penyusun
sehingga praktikum dan penyusunan laporan ini yang berjudul “ Laporan lengkap
Praktikum Mata Kuliah Fisiologi
Tumbuhan” dapat terlaksana dengan
baik. Tak lupa penyusun mengucapkan rasa terima
kasih kepada semua pihak yang telah banyak berperan penting dalam membantu
penyusunan laporan ini, yaitu kepada bapak dan ibu sebagai dosen pembimbing
yang banyak memberikan semangat dan masukan baik dalam toeri maupun
pelaksanaannya, dan terutama kakak asisten yang telah memberikan bimbingan da
arahan selama kegiatan praktikum hingga sampai saat penyusunan laporan.
Dalam penyusunan laporan lengkap peyusun meyadari bahwa laporan ini
sangat jauh dari kesempurnaan dan masih banyak kekurangan, oleh karena itu
peyusun mengharapkan kritik dan saran yang bersifat membangun sehingga dapat
dijadikan pedoman agar memperbaiki penyusunan laporan selanjutnya. Pada
kesempatan ini penyusun menyampaikan ucapan terima kasih banyak kepada semua
pihak yang telah memberikan dukungan maupun bantuan dalam menyusun laporan
lengkap ini dan semoga
laporan ini dapat bermanfaat bagi kita semua baik sekarang maupun di masa yang
akan datang.
Palu, November 2011
Penyusun
DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN SAMPUL
i
HALAMAN JUDUL
ii
HALAMAN PENGESAHAN
iii
UCAPAN TERIMAKASIH iv
KATA PENGANTAR v
DAFTAR ISI
vi
DAFTAR GAMBAR xv
DAFTAR TABEL xvi
DAFTAR GRAFIK
xvii
MENGUKUR POTENSIAL AIR UMBI KENTANG
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang....................................................................................... 1
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................. 2
II.
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Botani Umbi Kentang (Solaum
tuberosum. L)....................................... 3
2.2 Mengukur Potensial Air.......................................................................... 4
III. METODELOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................. 5
3.2 Alat dan Bahan....................................................................................... 5
3.3 Cara Kerja............................................................................................... 5
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil........................................................................................................ 7
4.2 Pembahasan............................................................................................ 8
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................
10
5.2 Saran...................................................................................................... 10
MENGUKUR LAJU TRANSPIRASI DENGAN PENIMBANGAN
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang...................................................................................... 11
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................ 12
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Botani Tomat (Solanum lycopersicum. L)............................................. 13
2.2 Laju Transpirasi..................................................................................... 14
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................ 16
3.2 Alat dan Bahan...................................................................................... 16
3.3 Cara Kerja..............................................................................................
16
IV. HASIL DAN
PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 17
4.2 Pembahasan........................................................................................... 17
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................ 19
5.2 Saran...................................................................................................... 19
PENGARUH TURGOR TERHADAP
MEMBUKA DAN MENUTUPNYA STOMATA
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang...................................................................................... 20
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................ 21
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Botani Tanaman Rhoeo discolor............................................................ 22
2.2 Stomata.................................................................................................. 22
2.3 Mekanisme Membuka dan Menutupnya Stomata................................. 23
2.4 Faktor -Faktor yang Mempengaruhi
Membuka
dan Menutupnya Stomata.................................................... 25
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................ 27
3.2 Alat dan Bahan...................................................................................... 27
3.3 Cara Kerja.............................................................................................. 27
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 29
4.2 Pembahasan........................................................................................... 30
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................
33
5.2 Saran......................................................................................................
33
IMBIBISI
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang...................................................................................... 34
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................ 35
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Botani Kacang Hijau (Phaseolus radiatus L.)....................................... 36
2.2 Zat-Zat Hdropilik
............................................................................... 37
2.2 Imbibisi.................................................................................................. 37
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................ 39
3.2 Alat dan Bahan...................................................................................... 39
3.3 Cara Kerja.............................................................................................. 39
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 40
4.2 Pembahasan........................................................................................... 40
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................ 43
5.2 Saran...................................................................................................... 43
PENGARUH ZAT PENGATUR
TUMBUH TERHADAP PERKECAMBAHAN BIJI
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang...................................................................................... 44
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................ 45
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Zat Pengatur Tumbuh (ZPT)................................................................. 46
2.2 Caumarin............................................................................................... 46
2.3 2,4-D...................................................................................................... 47
2.4 Giberelin................................................................................................ 48
2.5 Urea....................................................................................................... 49
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................ 51
3.2 Alat dan Bahan...................................................................................... 51
3.3 Cara Kerja.............................................................................................. 51
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 52
4.2 Pembahasan........................................................................................... 52
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................ 54
5.2 Saran...................................................................................................... 54
PENGARUH AUKSIN TERHADAP PEMANJANGAN JARINGAN
I. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang...................................................................................... 55
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................ 55
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Auksin................................................................................................... 57
2.2 Faktor-Faktor
Yang Mempengaruhi Auksin......................................... 58
2.3
Hipokotil............................................................................................... 60
2.4 Jaringan
Tumbuhan.............................................................................. 60
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................ 63
3.2 Alat dan Bahan......................................................................................
63
3.3 Cara Kerja..............................................................................................
63
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 64
4.2 Pembahasan........................................................................................... 64
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................ 66
5.2 Saran......................................................................................................
66
MENGUKUR KADAR KLOROFIL DENGAN SPEKTROFOTOMETER
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang......................................................................................
67
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................ 68
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Klorofil.................................................................................................. 69
2.2 Spektrofotometer................................................................................... 70
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................... 72
3.2 Alat dan Bahan......................................................................................... 72
3.3 Cara Kerja................................................................................................. 72
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 73
4.2 Pembahasan........................................................................................... 75
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................ 78
5.2 Saran...................................................................................................... 78
PEMISAHAN PIGMEN
FOTOSINTETIK DENGAN KROMATOGRAFI KERTAS
I.
PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang...................................................................................... 79
1.2 Tujuan dan Kegunaan............................................................................
80
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Pigmen Tumbuhan................................................................................. 81
2.2 Klorofil A dan Klorofil B...................................................................... 82
III. METODOLOGI
3.1 Tempat dan Waktu................................................................................ 84
3.2 Alat dan Bahan......................................................................................
84
3.3 Cara Kerja.............................................................................................. 84
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil....................................................................................................... 85
4.2 Pembahasan........................................................................................... 85
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan............................................................................................ 87
5.2 Saran...................................................................................................... 87
DAFTAR PUSTAKA
LAMPIRAN
BIODATA PENYUSUN
DAFTAR GAMBAR
No. Halaman
1. Anatomi Stomata
Epidermis bawah Rhoeo discolor yang
ditetesi Larutan Sukrosa 10 pada mikroskop
dengan perbesaran 10x..................................................................................................... 29
2. Anatomi Stomata
Epidermis bawah Rhoeo discolor yang ditetesi Larutan Air 10 pada
Mikroskop dengan Perbesaran 10x.................................................................................................... 29
DAFTAR TABEL
No.
Halaman
1. Penambahan panjang
Umbi Kentang ( Solanum
tuberosum. L) selama perendaman 2
jam. 7
2 Perubahan Laju Transpirasi Pada Tanaman
Tomat (Solanum lycopersicum. L).... 17
3. Pengamatan Stomata Terbuka dan Tertutup Pada Preparat dan Rhoeo discolor 29
4. Perubahan Berat Biji Kacang Hijau (Phaseolus radiatus) yang di rendam selama 48 jam 40
5. Persentase biji
Kecambah Kacang Hijau (Phaseolus radiatus)
pada beberapa Zat Pengatur Tumbuh 52
6. Pengaruh Auksin Terhadap Pemanjangan
Jaringan ......................................... 64
7. Jenis Pigmen yang
Terkandung Dalam Kromatografi Kertas........................... 85
DAFTAR GRAFIK
No Halaman
1. Penambahan panjang
Umbi Kentang ( Solanum
tuberosum. L) selama perendaman 2 jam. 7
I. PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Semua proses fisiologi di dalam jaringan tanaman tidak
akan terjadi tanpa adanya air yang berperan penting dalam proses tersebut. Selama pertumbuhan tanaman air memiliki
peranan penting di antaranya berperan sebagai pelarut bahan-bahan organik,
bahan utama proses fotosintesis dan lain-lain.
Jika tanaman mengalami stress air, maka pertumbuhan dan perkembangan
tanaman tersebut tidak akan berjalan normal.
Air masuk ke dalam sel tanaman melalui proses difusi, yang mana proses
difusi ini terjadi karena perbedaan konsentrasi, yaitu konsentrasi di ruang
yang dalam sel lebih rendah di bandingkan
konsentrasi di luar sel.
Sel
tumbuhan dapat mengalami kehilangan air yang besar jika potensial air di luar
sel lebih rendah dibandingkan dengan potensial air di dalam sel, sehingga akan
mengakibatkan volume isi sel akan menurun dan tidak akan mampu mengisi seluruh
telah dibentuk oleh sel tersebut (Anonim,
2009).
2.1 Tujuan dan Kegunaan
Tujuan dilaksanakannya
praktikun tentang Mengukur Potensial Air Umbi Kentang ini adalah untuk
mengetahui potensial osmotik pada umbi kentang dan ubi jalar.
kegunaan praktikum ini
adalah agar para praktikan dapat mengidentifikasi peristiwa fisiologi tumbuhan
terutama potensial osmotik umbi kentang.
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Botani Kentang (Solanum tuberosum)
Tanaman kentang (Solanum tuberosum L.) merupakan tanaman
semusim yang berbentuk semak, termasuk dalam kerajaan Plantae, divisi Magnoliophyta,
kelas Magnoliopsida, sub kelas asteridae,
ordo solanales, famili solanaceae, genus solanum
dan spesies solanum tubero L. (Nurmayulisun, 2009).
Menurut Sunaryono (2008),
bentuk morfologi dari tanaman kentang (Solanum
tuberosum L.) dimana bentuk morfologi
batangnya ada yang berbentuk bulat,
slindris, pada bagian pucuk berbulu dan berwarna hijau muda. Memiliki sistem perakaran tunggang dan
berwarna putih kekuningan.
Daun
dari tanaman kentang merupakan daun majemuk, berbulu dengan ujung meruncing,
tepi rata, bagian pangkal daun runcing, panjang daun 12-15 cm, lebar 6-8 cm, memiliki pertulangan menyirip dan
daun berwarna hijau.
Tanaman
kentang memiliki bunga yang majemuk, bercabang dan berbentuk garpu di ujung
serta di ketiak daun, memiliki kelopak dengan panjang 8.5-15 mm, bunga berwarna
hijau keputih-putihan. Mahkota bunga
pendek, berbentuk lonjong dan berwarna putih.
Benang sari melekat pada tabung mahkota, memiliki bakal buah dengan 2-6 ruang di dalam mahkota bunga yang
mengandung banyak bakal biji. Tangkai putik berbentuk jarum dengan kepala putik yang
kecil dan berwarna putih. Buah dari
tanaman kentang berbentuk bulat lonjong dan berwarna coklat. Memiliki biji dengan bentuk pipih atau
berbentuk ginjal dan berwarna kuning.
2.2
Mengukur Potensial Air
Potensial
air adalah potensial kimia air dalam suatu system atau bagian system. Dinyatakan dalam satuan tekanan dan
dibandingkan dengan potensial kimia air murni (juga dalam satuan tekanan) pada
tekanan atmosfer dan pada suhu serta ketinggian yang sama potensial murni
ditentukan sama dengan nol. Faktor-faktor penghasil gradient yaitu konsentrasi atau
aktifitas, suhu, tekanan, efek larutan terhadap potensial kimia pelarut,
matriks. Mengukur metode air dengan
metode volume jaringan, metode chordate, metode tekanan uap (Anonim, 2005).
Besar jumlah potensial air pada tumbuhan dipengaruhi oleh 4 macam
komponen potensial, yaitu gravitasi, matriks, osmotik dan tekanan. Potensial
gravitasi bergantung pada air di dalam daerah gravitasi. Potensial matriks bergantung pada kekuatan
mengikat air saat penyerapan. Potensial osmotik bergantung pada hidrostatik atau tekanan
angina dalam air (Deragon, 2005).
III.
METODE PRAKTEK
3.1
Tempat dan Waktu
Praktikum tentang Mengukur Potensial Air Umbi Kentang ini
dilaksanakan di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian, Universitas
Tadulako, Palu. Pada hari Rabu, tanggal 20 Oktober 2010, pada
pukul 14.00 WITA sampai selesai.
3.2 Alat dan Bahan
Alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini
adalah cutter, alat pengebor gabus atau antena radio, mistar berskala
milimeter, botol yang bermulut besar(botol selai) dan kertas label.
3.3 Cara Kerja
Cara
kerjanya adalah dengan terlebih dahulu memilih umbi kentang (Solanum
tuberosum L.) yang berukuran besar, kemudian membuat silinder
umbi dengan alat pengebor sepanjang 40 mm sebanyak 2 buah, menyiapkan 6 botol
selei dengan masing-masing diisi larutan sukrosa yang telah ditentukan sebanyak
30 ml, setiap botolnya diisi dengan satu
konsentrasi dengan memberikan label pada masing-masing botol. Memasukan potongan umbi kedalam botol yang
masing-masing diisi 2 potongan umbi, disarankan agar dapat dilakukan dengan
capat untuk mengurangi terjadinya penguapan, botol ditutup dengan rapat selama
percobaan itu berlangsung. Selanjutnya membiarkan silinder umbi
dalam larutan selama 2 jam untuk memberi kesempatan pada umbi melakukan
keseimbangan dengan larutan sukrosa tersebut. Setelah 2 jam, umbi diambil dari
botol dan mengukurnya kembali
panjang masing-masing dengan cermat dan mencatatnya dibuku. Kemudin menghitung
panjang rata-rata dari kedua umbi yang ada serta membuat grafik dari data yang
diperoleh dengan molaritas larutan sebagai sumbu X dan rata-rata panjang
silinder sebagai sumbu Y, dan yang paling terakhir adalah menentukan dengan
grafik pada konsentrasi berapakah molar silinder umbi tidak mengalami prubahan
panjang.
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil
Dari hasil pengamatan tersebut dapat di ketahaui
hasilnya sebagai berikut:
Tabel 1.
Penambahan panjang Umbi
Kentang ( Solanum tuberosum L.)
selama perendaman 2 jam.
Perlakuan (m)
|
Rata”panjangawal (cm)
|
Rata”panjang akhir(cm)
|
Selisih
|
0,2 m
|
4 cm
|
4,35 cm
|
0,35
|
0,4 m
|
4 cm
|
3,85 cm
|
0,15
|
0,6 m
|
4 cm
|
3,75 cm
|
0,25
|
0,8 m
|
4 cm
|
3,75 cm
|
0,25
|
1,0 m
|
4 cm
|
4,45 cm
|
0,45
|
Control
|
4 cm
|
4,25 cm
|
0,25
|
Grafik 1. Perubahan Panjang Umbi Kentang (Solanum tuberosum L.) Selama 2 Jam.
2 Pembahasan
Sesuai
dengan hasil pengamatan di atas dapat dilihat bahwa umbi kentang (Sholanum tuberosum L.) yang direndam di dalam air (kontrol) memiliki
penambahan panjang dengan panjang akhir rata-rata yaitu 4,25 cm dari panjang
awalnya 4 cm, hal ini disebabkan karena air memiliki viskositas (kekentalan)
yang rendah sehingga menyebabkan air dengan mudah melakukan difusi ke dalam
jaringan umbi kentang dan menyebabkan potensial air dalam sel umbi kentang
menjadi meningkat.
Pada pengamatan dengan menggunakan larutan
sukrosa, Meskipun larutan ini memiliki viskositas (kekentalan) yang cukup
tinggi dari larutan sukrosa yang lainnya, Umbi Kentang (Sholanum tuberosum L.) yang direndam dalam larutan sukrosa 1,0 M
memiliki rata-rata panjang akhir yang tertinggi, dengan panjang awal 4 cm dan
panjang akhir 4,45 cm. Hal ini
disebabkan karena adanya kemungkinan pada saat perendaman umbi kentang memiliki
potensial air yang cukup rendah sehingga larutan sukrosa dapat mengalir secara
difusi ke dalam sel umbi kentang tanpa mengalami hambatan, sehingga potensial
air dalam sel umbi kentang
meningkat. Panjang akhir
rata-rata umbi kentang yang terendah adalah pada umbi kentang yang direndam di
dalam larutan sukrosa 0,6 dan 0,8 M dengan mengalami penyusutan panjang
sebanyak 0,25 cm, hal ini disebabkan karena penambahan potensial air dalam sel
umbi kentang sangat rendah meskipun viskositas larutan lebih rendah
dibandingkan viskositas larutan sukrosa yang lainnya.
Dari hasil tersebut, ditemukan umbi Kentang
yang di rendam di dalam larutan sukrosa 0,4 M 0,6 M dan 0.4 M dengan panjang
akhirnya mengalami penurunan, hal ini disebabkan karena larutan sukrosa mampu
menyerap air secara osmosis dari dalam sel umbi kentang itu sendiri, sehingga
terjadi penyusutan.
Air merupakan suatu molekul yang sederhana,
terdiri dari satu atom O dan dua atom H sehingga berat molekulnya hanya 18
g/mol. Salah satu karakteristik dari
molekul air adalah memiliki viskositas yang rendah, sehingga air dapat mengalir
dengan mudah ke dan dalam jaringan tumbuhan (Lakitan, 2004).
Larutan yang sering digunakan dalam
mengestiminasi potensial air adalah larutan sukrosa (C12H22O11),
sampel yang dimasukkan ke dalam seri larutan akan kehilangan atau menyerap air
secara osmosis. Jika densitas larutan tidak berubah, berarti potensial
air sampel yang diuji sama dengan larutan sukrosa tersebut (Malik, 2008).
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan dari hasil yang telah diperoleh, maka dapat
diambil beberapa kesimpulan sebagai berikut :
1.
Suatu
tanaman jika direndam dalam suatu larutan, maka potensial air dalam sel tanaman
tersebut akan berubah tergantung pada konsentrasi serta viskositas larutan yang digunakan.
2.
Potensial
air dalam sel suatu tanaman menentukan proses pertumbuhan dan perkembangan dari
tanaman itu sendiri, karena selama proses hidupnya tanaman membutuhkan air yang
cukup banyak.
3.
Air
masuk ke dalam sel tanaman melalui proses difusi, yang mana proses difusi ini
terjadi karena perbedaan konsentrasi, yaitu konsentrasi di dalam sel lebih
rendah di bandingkan konsentrasi di luar sel.
5.2
Saran
Diharapkan kepada asisten kiranya dapat
mengarahkan para praktikan selama praktek berlangsung, agar jalanya praktek yang dilaksanakan ini dapat berjalan
sesuai dengan prosedur yang berlaku.
I.
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Transpirasi dapat diartikan sebagai proses
kehilangan air dalam bentuk uap dari jaringan tumbuhan melalui stomata,
kemungkinan kehilangan air dari jaringan tanaman melalui bagian tanaman yang
lain dapat saja terjadi, tetapi porsi kehilangan tersebut sangat kecil
dibandingkan dengan yang hilang melalui stomata. Cepat lambatnya proses transpirasi ditentukan
oleh faktor-faktor yang mampu merubah wujud air sebagai cairan ke wujud air
sebagai uap atau gas dan faktor-faktor yang mampu menyebabkan pergerakan uap
atau gas. Faktor-faktor tersebut meliputi
suhu, cahaya, kelembaban udara, dan angin.
Di samping itu luas permukaan jaringan epidermis atau luka tempat proses
Transpirasi berlangsung juga ikut berperan (Anonim, 2009).
Air diserap ke dalam akar secara osmosis melalui rambut akar, sebagian besar bergerak menurut gradien potensial air
melalui xilem. Air dalam
pembuluh xilem mengalami tekanan besar karena molekul air
polar menyatu dalam kolom berlanjut akibat dari penguapan yang berlangsung di
bagian atas. Sebagian besar ion bergerak
melalui simplas dari epidermis akar ke xilem, dan kemudian ke atas
melalui arus transportasi. Sebagian besar transpirasi berlangsung melalui
stomata sedang melalui kutikula daun dalam jumlah yang lebih
sedikit. Transpirasi terjadi pada saat
tumbuhan membuka stomatanya untuk mengambil karbon dioksida dari udara untuk berfotosintesis. Lebih
dari 20 % air yang
diambil oleh akar dikeluarkan ke udara
sebagai uap air.
Sebagian besar uap air yang di transpirasi oleh tumbuhan tingkat tinggi berasal dari daun selain
dari batang, bunga dan buah. Lubang stomata yang tidak bundar
melainkan oval itu juga berpengaruh terhadap intensitas pengeluaran air, yang
mana jika lubang-lubang itu terlalu berdekatan maka penguapan dari lubang yang
satu akan menghambat penguapan dari lubang yang yang lain yang saling
berdekatan (Ahmad, 2009).
1.2
Tujuan dan Kegunaan
Tujuan
dilaksanakannya praktikun
tentang Mengukur Laju Transpirasi dengan Penimbangan ini
adalah untuk mengetahui pengaruh faktor lingkungan pada laju transpirasi
tumbuhan.
kegunaan
yang kita ambil adalah kita dapat mengetahui pengaruh cahaya matahari terhadap
pertumbuhan
II.
TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Botani Cabai (Capsicum annuum L.)
Kekurangan cahaya matahari akan mengganggu proses
fotosintesis dan pertumbuhan , meskipun kebutuhan cahaya tergantung pada jenis
tumbuhan. Selain itu , kekurangan cahaya saat perkecambahan berlangsung akan
menimbulkan gejala etiolasi dimana batang kecambah akan tumbuh lebih cepat
namun lemah dan daunnya berukuran kecil, tipis dan bewarna pucat (tidak hijau).
Semua ini terjadi dikarenakan tidak adanya cahaya sehingga dapat memaksimalkan
fungsi auksin untuk pemanjangan sel-sel tumbuhan. Sebaliknya , tumbuhan yang
tumbuh di tempat terang menyebabkan tumbuhan tumbuhan tumbuh lebih lambat
dengan kondisi relative pendek , daun berkembang baik lebih lebar, lebih hijau
, tampak lebih segar dan batang kecambah lebih kokoh.
Cabai rawit (Capsicum annuum L.) termasuk ke dalam
famili Solanaceae. Terdapat sekitar 20-30 spesies yang termasuk ke
dalam genus Capsicum, diantaranya adalah lima spesies yang telah dibudidayakan,
yaitu : C. baccatum, C. pubescens, C. annuum, C. chinense dan C. frutescent. s
Klasifikasi tanaman cabai :
Divisio : Spermatophyta
Sub divisio : Angioispermae
Classis : Dicotyledone
Ordo : Tubiflorae
Familia : Solanaceae
Genus : Capsicum
Species : Capsicum annuum L.
Divisio : Spermatophyta
Sub divisio : Angioispermae
Classis : Dicotyledone
Ordo : Tubiflorae
Familia : Solanaceae
Genus : Capsicum
Species : Capsicum annuum L.
2.2
Botani Tomat (Solanum lycopersicum L.)
Tomat (Solanum Lycopersicum L.) adalah tumbuhan
dari keluarga Solanaceae, tumbuhan asli Amerika
Tengah dan Selatan, dari Meksiko
sampai Peru.
Tomat merupakan tumbuhan siklus hidup singkat, dapat tumbuh setinggi 1 sampai 3
meter. Tomat merupakan keluarga dekat dari kentang.
2.3
Mengukur Potensial Air
Potensial
air adalah potensial kimia air dalam suatu system atau bagian system. Dinyatakan dalam satuan tekanan dan
dibandingkan dengan potensial kimia air murni (juga dalam satuan tekanan) pada
tekanan atmosfer dan pada suhu serta ketinggian yang sama potensial murni
ditentukan sama dengan nol. Faktor-faktor penghasil gradient yaitu konsentrasi atau
aktifitas, suhu, tekanan, efek larutan terhadap potensial kimia pelarut,
matriks. Mengukur metode air dengan
metode volume jaringan, metode chordate, metode tekanan uap (Anonim, 2005).
Besar jumlah potensial air pada tumbuhan dipengaruhi oleh 4 macam
komponen potensial, yaitu gravitasi, matriks, osmotik dan tekanan. Potensial
gravitasi bergantung pada air di dalam daerah gravitasi. Potensial matriks bergantung pada kekuatan
mengikat air saat penyerapan. Potensial osmotik bergantung pada hidrostatik atau
tekanan angina dalam air (Deragon, 2005).
III.
METODE PRAKTEK
3.1 Tempat dan Waktu
Praktikum
tentang Mengukur Laju Transpirasi dengan
Penimbangan ini dilaksanakan di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian,
Universitas Tadulako palu. Dilaksanakan pada hari rabu, tanggal 20 Oktober 2010, pada pukul 14.00 WITA sampai selesai.
3.2
Alat dan Bahan
Alat-alat
yang digunakan dalam praktikum ini adalah 2 buah botol plastik, 2 buah gabus
penutup atau kapas, alumunium foil, satu spesies tumbuhan yang masih kecil dan
alat timbang yang sesuai.
3.3 Cara Kerja
Cara
kerja praktikum tentang
Mengukur Laju Transpirasi ini adalah
terlebih dahulu menyiapkan dua pucuk tanaman (4cm) kemudian menyiapkan dua buah
botol dan mengisinya dengan air (1/2 tinggi botol), botol yang telah dilubangi
ditutup dengan alumunium foil kemudian memasukan spesimen melalui lubang pada
penutup. Kemudian menimbang
botol berikut tanaman dan mencatat beratnya
pada sebuah kertas, meletakkan botol tersebut pada ruang yang berbeda
yaitu satu dalam ruangan sedangkan yang satunya lagi diletakan diluar ruangan
yang tersinari oleh matahari, setelah itu melakukan pengukuran beratnya setiap
30 menit sebanyak 3X kemudian menghitung kecepatan transpirasi dari
masing-masing perlakuan dalam mg/cm luas daun.
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil
Dari hasil pengamatan tentang
Mengukur Laju Transpirasi pada tanaman tomat (Solanum lycopersicum L.) dan cabai (Capsicum annum L.) adalah sebagai berikut:
Tabel 1. Perubahan laju
transpirasi pada tanaman tomat (Solanum
lycopersicum) dan cabai (Capsicum
annum L.)
Selisih
1 dan 3
|
Penimbangan
|
Penimbangan
|
Penimbangan
|
|
I
|
II
|
III
|
||
Dalam
ruangan
|
307,88
|
307,31
|
307,05
|
0,83
|
|
385,48
|
385,09
|
384,02
|
1,46
|
Luar
ruangan
|
296,70
|
296,37
|
296,18
|
0,52
|
|
600,88
|
598,47
|
597,43
|
3,45
|
4.2
Pembahasan
Dari hasil pengamatan
yang di peroleh, pada tanaman tomat (Solanum
lycopersicum L.) dan cabai (Capsicum
annuum L.) yang diletakkan
di dalam ruangan atau yang tidak terkena sinar matahari langsung memiliki berat
awal 307,88 dan 385,48 g. Pada hasil
penimbangan pertama yaitu setelah 30 menit pertama, berat tanaman tomat dan
cabai mengalami penurunan bobot menjadi 307,31 dan 385,09 g. Pada saat
penimbangan kedua yaitu setelah 60 menit berat tomat dan cabai mengalami
penurunan bobot lagi menjadi 307,05 dan 385,02 g.
Berdasarkan hasil penimbangan tersebut dapat
diketahui bahwa proses transpirasi (penguapan) juga terjadi dalam ruangan
dengan waktu yang bertahap, namun dengan selisih yang tidak terlalu
banyak. Penyebab terjadinya transpirasi
pada tanaman tomat dan cabai tersebut dikarenakan laju transpirasi tanaman
tomat dan cabai sangat cepat meskipun tanpa membutuhkan cahaya yang cukup, hal
ini ditunjang dengan banyaknya jumlah daun dan juga luas daun .
Pada tanaman tomat dan cabai yang terkena sinar matahari langsung
atau yang diletakkan di luar ruangan, memiliki berat awal 296,70 dan
600,88. Pada penimbangan pertama yaitu
setelah 30 menit pertama, berat tanaman tomat dan cabai mengalami penurunan
bobot menjadi 296,37 dan 598,47g, dan pada penimbangan kedua yaitu setelah 60
menit berjalan, berat tanaman berkurang lagi menjadi 296,18 dan 597,43 g.
Sehingga dari hasil penimbangan tersebut dapat dilihat selisih antara
penimbangan pertama dan ketiga cukup baik dengan selisih rata-rata diatas 1.0
g, hal ini dikarenakan oleh sinar matahari yang cukup optimal yang diterima
oleh tanaman pada saat tanaman melakukan proses transpirasi. Banyaknya jumlah
daun dan juga luas daun 300 cm2 sangat berpengaruh dalam proses
transpirasi ini.
Transpirasi yang terjadi pada tanaman berfungsi untuk mendinginkan
suhu tanaman, mengurangi kelebihan air dan mempercepat proses penyerapan unsur
hara oleh akar tanaman. Proses
transpirasi dapat berlangsung secara optimal jika faktor-faktor yang
mempengaruhi proses transpirasi tersebut berada pada kondisi yang optimal
pula. Faktor-faktor transpirasi ini diantaranya cahaya, suhu,
luas daun, jumlah stomata yang dimiliki dan lain-lain. Laju transpirasi dipengaruhi oleh ukuran
tumbuhan, kadar CO2, cahaya, suhu, aliran
udara, kelembaban, dan tersedianya air tanah. Faktor-faktor
ini mempengaruhi perilaku stomata yang membuka dan menutupnya dikontrol oleh
perubahan tekanan turgor sel penjaga
yang berkorelasi dengan kadar ion kalium (K+) di dalamnya. Selama stomata terbuka, terjadi pertukaran gas antara daun dengan atmosfer dan air akan hilang ke dalam atmosfer (Anonim, 2009).
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan hasil yang diperoleh, maka dapat ditarik
beberapa kesimpulan sebagai berikut :
1. Proses transpirasi
dapat berlangsung secara optimal jika faktor-faktor pendukungnya ada pada
kondisi yang optimal pula.
2. Faktor-faktor transpirasi ini diantaranya cahaya, suhu,
luas daun, jumlah stomata yang dimiliki dan lain-lain.
3. Laju
transpirasi pada tanaman yang terkena sinar matahari langsung berbeda dengan
laju transpirasi pada tanaman yang tidak terkena sinar matahari langsung,
meskipun jenis tanaman, jumlah daun dan media yang di gunakan sama.
5.2
Saran
Diharapkan
kepada para praktikan kiranya dapat mematuhi semua peraturan yang berlaku
selama dalam ruangan, dan serius dalam mengikuti praktikum agar apa yang telah
di praktekan dapat dipahami dengan baik.
I. PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Sebagian
besar proses transpirasi pada tanaman lewat stomata, stomata bagian terbesar
berada pada permukaan bawah daun yang memungkinkan terjadinya pertukaran gas
antara yang ada dalam jaringan daun dan di udara. Lubang stomata ini merupakan jalan utama untuk
transpirasi, mengingat epidermis bawah dan atas dilapisi oleh lilin sebagai
lapisan kutikula yang mengandung bahan lemak dan merupakan penghalang untuk
transpirasi (Anonim, 2007).
Membuka
dan menutupnya stomata penting bagi proses asimilasi CO2 dan juga keseimbangan
air dalam tanaman. Membuka menutupnya
stomata tergantung pada perubahan turgor sel penjaga (sel stomata). Turgor yang tinggi menyebabkan stomata
membuka sebaliknya turgor yang rendah akan menyebabkan stomata menutup
(Salisbury dan Ross, 1995).
1.2
Tujuan dan Kegunaan
Tujuan
praktikum Fisiologi Tumbuhan tentang Pengaruh Turgor Terhadap Membuka dan
Menutupnya Stomata adalah mempelajari pengaruh turgor terhadap mekanisme
membuka dan menutupnya stomata. Kegunaannya adalah praktikan
dapat mengetahui tekanan turgor dapat mempengaruhi mekanisme membuka dan
menutupnya stomata.
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Botani Rhoeo discolor
Rhoeo discolor Biasa
ditanam orang sebagai tanaman hias, tumbuh subur di tanah yang lembab. Termasuk anggota suku gawar-gawaran, berasal
dari Meksiko dan Hindia Barat. Tinggi
pohon 40 cm - 60 cm, batang kasar, pendek, lurus, tidak bercabang. Daun lebar
dan panjang, mudah patah, warna daun di permukaan atas hijau dan di bagian
bawah berwarna merah tengguli. Panjang
daun + 30 cm, lebar 2,5 - 6 cm. Bunga
berwarna putih, berbentuk bunga kerang
Klasifikasi tanamn Rhoeo discolor:
Kingdom : Plantae
(Tumbuhan).
Subkingdom : Tracheobionta
(Tumbuhan berpembuluh).
Super Divisi : Spermatophyta
(Menghasilkan biji).
Divisi : Magnoliophyta
(Tumbuhan berbunga).
Kelas : Liliopsida
(berkeping satu / monokotil).
Sub Kelas : Commelinidae.
Ordo : Commelinales.
Famili : Commelinaceae
.
Genus : Rhoeo.
Spesies :
Rhoeo discolor
2.2 Stomata
Stomata berasal
dari bahasa Yunani yaitu Stoma yang berarti lubang atau porus, jadi stomata adalah lubang-lubang kecil berbentuk lonjong
yang dikelilingi oleh dua sel epidermis khusus yang disebut sel penutup
(Guard Cell), dimana sel penutup tersebut adalah sel-sel epidermis yang telah
mengalami kejadian perubahan bentuk dan fungsi yang dapat mengatur besarnya
lubang-lubang yang ada diantaranya (Dalimunthe, 2004).
Stomata
dapat dibagi menjadi beberapa bagian diantaranya yaitu bagian sel penutup atau sel penjaga (guard cell), bagian yang merupakan sel tetangga,
dan ruang udara dalam. Sel penutup
terdiri dari sepasang sel yang kelihatannya simetris, umumnya berbentuk
ginjal, pada dinding sel atas dan bawah tampak adanya alat yang berbentuk
birai (ledges), kadang-kadang birai
tersebut hanya terdapat pada dinding sel bagian atas (Damayanti, 2007).
Stomata
mempunyai fungsi sebagai pintu gerbang masuknya CO2 ke
dalam daun dan keluarnya uap air dari dalam daun. Besar kecilnya pembukaan stomata merupakan
regulasi terpenting yang dilakukan oleh tanaman, dimana tanaman berusaha
memasukkan CO2 sebanyak mungkin tetapi dengan mengeluarkan H2O
sesedikit mungkin, untuk mencapai efisiensi pertumbuhan yang tinggi (June,
2008).
Stomata
tumbuhan pada umumnya membuka saat matahari terbit dan menutup saat hari
gelap. Proses pembukaan berlangsung 1 jam dan penutupan berlangsung secara
bertahap sepanjang sore.
2.2.1 Mekanisme Membuka dan
Menutupnya Stomata
Membuka
dan menutupnya stomata penting bagi proses asimilasi CO2 dan juga
keseimbangan air dalam tanaman.
Membuka menutupnya stomata tergantung pada perubahan turgor sel
penjaga (sel stomata). Turgor yang
tinggi menyebabkan stomata membuka sebaliknya turgor yang rendah akan
menyebabkan stomata menutup.
Suatu
penelitian menunjukkan bahwa turgor sel penjaga berkaitan dengan metabolisme
penyerapan ion, terutama K+.
Meningkatnya konsentrasi K+ pada sel penjaga, stomata
membuka lebih lebar sebaliknya ketika menutup tidak terjadi akumulasi K+
(Salisbury dan Ross, 1995).
Mekanisme
membuka menutupnya stomata terutama tergantung pada akumulasi K+
pada sel stomata dan bukan semata-mata oleh adanya hidrolisa amilum menjadi
gula sebagaimana dipercaya selama ini, hidrolisa amilum ini hanya faktor
sekunder.
Untuk
akumulasi K+ ini disediakan sebagian oleh vakuola sel lateral dan
sebagian lagi oleh sel epidermis. Akumulasi K+ ini akan berbalik
bila stomata menutup, yaitu K+ berakumulasi di sel epidermis.
Tidak ada perbedaan electro potential yang menyolok antara setiap sel
epidermis dan bagaimanapun keadaan stomata, K+ ditransport secara
aktif dan ketika stomata membuka atau menutup memerlukan energi.
Temperatur
yang tinggi juga mengakibatkan stomata menutup. Hal ini terkait dengan
meningkatnya respirasi dan meningkatnya CO2 dalam kantong stomata.
Temperatur yang tinggi berkaitan dengan konsumsi air yang tinggi. Stomata menutup untuk mencegah kehilangan
air yang berlebihan. Mekanisme
membuka dan menutupnya stomata
secara efisien dengan mengatur keseimbangan air dalam tanaman. Fitohormon
sitokinin juga berpengaruh terhadap membukanya stomata sedang ABA kebalikannya
.
2.2.2 Faktor-Faktor Yang
Mempengaruhi Membuka dan Menutupnya Stomata
Faktor-faktor
lain yang menyebabkan membuka dan menutupnya stomata adalaha sebagai berikut
:
1. Karbondioksida (CO2)
Pembentukan
stomata berkurang jika kadar CO2 di ruang antar sel bertambah.
Jika hasil fotosintesis bersih berkurang kadar CO2 di ruang antar
sel meningkat dan tahanan stomata akan meningkat. Sebaiknya kalau
fotosintesis bersih meningkat, ruang antar sel akan menyebabkan terbukanya
ruang antar sel akan menyebabkan terbukanya stomata.
2. Cahaya
Pengurangan cahaya menyebabkan pembukaan
celah stomata berkurang pada kebanyakan tumbuhan. Hal ini tidak tergatung
pada tanggapan stomata terhadap kenaikan CO2 di ruang antar sel akibat penurunan
laju fotosinetesis.
3. Suhu
Jika faktor lain dalam keadaan konstan,
biasanya stomata akan membuka lebih besar jika suhu naik.
4. Potensial
Air Daun
Perubahan pembukaan air biasanya dianggap
disebabkan oleh kenaikan kadar absisat yang dihasilkan dalam mesofil dengan
lajuyang tinggi atau oleh keduanya pada potensial daun berkurang.
5. Kelembaban
Beberapa jenis tumbuhan menunjukkan tanggapan
stomata secara langsung terhadap kelembaban, sehingga kenaikan kelembaban
relatif menyebabkan celah stomata mengecil.
6. AnginPada kebanyakan tanaman menaikkan
Kecepatan angin yang besar dapat menyebabkan
stomata menutup.
7. Laju Fotosintesis
Peranan laju fotositesis akan mengurangi
pembukaan stomata dan dengan demikian menahan air serta meningkat potensial
air melalui pengurangan respirasi. (Purwanti, 2007).
III.
METODE PRAKTEK
3.1
Tempat dan Waktu
Praktikum
Fisiologi Tumbuhan modul Pengaruh Turgor Terhadap Membuka dan Menutupnya
Stomata ini dilaksanakan di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian,
Universitas Tadulako, Palu. Pada hari
Rabu tanggal 27 Oktober 2010, pukul
14.00 WITA sampai selesai.
3.2
Alat dan Bahan
Alat
yang digunakan dalam Praktikum ini adalah mikroskop, gelas objek, gelas
penutup, pipet, pinset, kertas saring
dan tissue. Sedangkan bahan yang
digunakan yaitu daun Rhoeo discolor
yang masih segar, sukrosa 10 % dan air aqua.
3.3
Cara Kerja
Pada pengamatan Pengaruh Turgor Terhadap Membuka dan
Menutupnya Stomata pertama-tama membuat sayatan epidermis bawah daun Rhoeo discolour dengan menggunakan
silet atau dengan pinset, kemudian meletakannya pada gelas objek dengan
setetes air, selanjutnya menutup dengan gelas penutup. Setelah itu mengamatinya di bawah mikroskop
dengan perbesaran 10 X, apakah stomata dalam keadaan membuka atau menutup.
Sambil
mengamati di bawah mikroskop, mengganti reagen air dengan larutan sukrosa 10
%, dengan cara meneteskan pada sisi gelas penutup dan mengisapnya dengan
kertas saring pada sisi yang lain.
Mengamati perubahan apa yang terjadi, setelah itu mengulangi tahap no.
4 diatas, mengganti larutan sukrosa 10 % dengan air. Kemudian mengamati perubahan apa yang
terjadi dan menggambar anatomi stomata pada preparat tersebut, dan
menyebutkan bagian-bagian serta tipe stomata tumbuhan yang diamati.
IV.
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil
Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan, maka
diperoleh hasil sebagai berikut :
Tabel 4. Persentase
Stomata Terbuka dan
Stomata Tertutup Pada
Preparat
Daun Rhoeo discolor.
dan tertutup.
Gambar 1. Anatoi Stomata
Terbuka
Gambar 2. Anatomo Stomata Tertutup
4.2
Pembahasan
Berdasarkan
hasil di atas dapat diketahui bahwa jumlah stomata yang terbuka pada media
air lebih sedikit dibandingkan dengan jumlah stomata terbuka pada media
sukrosa10%, hal tersebut dapat pula dilihat pada persentase jumlah stomata
yang terbuka lebih banyak pada media sukrosa dibandingkan dengan media air.
Hal ini disebabkan karena larutan sukrosa
(gula) sangat mempengaruhi kenaikan kadar osmotik dalam sel sehingga tekanan
turgor meningkat kemudian stomata akan membuka sedangkan dalam air murni
kandungan gulanya sangat rendah bahkan mungkin tidak ada, sehingga tidak
terdapat suatu zat tertentu yang mempengaruhi membukanya stomata sehingga
jumlah stomata yang terbuka hanya sedikit. Begitu pula halnya dengan jumlah
stomata yang tertutup. Pada media air
jumlah stomata yang tertutup lebih banyak dibandingkan pada media sukrosa
10%. Hal ini disebabkan air tidak mampu memberikan pengaruh tekanan yang
besar terhadap turgor sehingga persentase stomata yang tertutup lebih banyak
dibandingkan dengan yang terbuka.
Pada
pengamatan anatomi stomata terbuka dari daun tanaman Rhoeo discolor, terlihat jelas adanya kedua sel penutup (guard
cell) yang berdekatan dengan inti sel yang terbuka pada bagian antar dinding
kedua sel yang berwarna agak kehitaman dan kedua sel penjaga tersebut tampak
bergelembung karena potensial air di dalamnya tinggi.
Pada
pengamatan anatomi stomata tertutup terlihat adanya kedua sel penutup yang
agak merapat karena potensial air di dalamnya yang rendah, hal ini
menyebabkan stomata tidak terbuka karena potensial airnya rendah. Pada sel
penutup tersebut, terdapat pula serat halus sellulosa yang pada
dinding selnya tersusun melingkari sel.
Karena serat sellulosa ini relatif
tidak elastis, maka jika sel epidermis menyerap air dapat mengakibatkan
sel ini tidak dapat membesar
diameternya melainkan memanjang.
Akibat melekatnya sel penutup satu sama lain pada kedua ujungnya
memanjang akibat menyerap air maka keduanya akan melengkung ke arah
luar. Kejadian ini yang menyebabkan
celah stomata membuka (Dalimunthe, 2004).
Salah
satu faktor membuka dan menutupnya stomata adalah cahaya, yaitu dengan adanya
cahaya maka fotosintesis dapat terjadi di dalam sel-sel mesophyl dan CO2
dalam ruang antar sel berkurang sehingga pH dalam sel penutup meningkat.
Peningkatan
pH dapat menyebabkan perubahan enzimatik menjadi gula, menaikkan kadar gula,
menaikkan kadar osmotik dari getah sel dan menaikkan turgor sehingga stomata
secara otomatis akan membuka (Dalimunthe, 2004).
Stomata
akan membuka jika tekanan turgor kedua sel penjaga meningkat. Peningkatan tekanan turgor sel penjaga
disebabkan oleh masuknya air ke dalam sel penjaga tersebut. Pergerakan air dari satu sel ke sel lainnya
terjadi secara difusi (Lakitan, 2004).
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan
hasil dan pembahasan di atas, maka dapat di ambil beberapa kesimpulan sebagai
berikut :
1.
Jumlah stomata pada tumbuhan sangat
menentukan proses fisiologis yang terjadi pada tumbuhan itu sendiri terutama
persentase stomata yang terbuka.
2.
Larutan sukrosa sangat efisien dalam
memberikan respon terhadap membukanya stomata dibandingkan dengan air murni.
3.
Membuka dan menutupnya stomata
diantaranya ada yang sebabkan mekanisme turgor, akumulasi ion kalium,
akumulasi asam absisat dan pengaruh lingkungan seperti suhu, kelembaban
maupun cahaya.
5.2
Saran
Sangat
diharapkan ketenangan dari para praktikan pada saat praktikum sedang
berlangsung, hal ini mengingat pentingnya kedisiplinan saat menjalani
praktikum sehingga praktikum dapat berjalan dengan hasil yang baik.
I.
PENDAHULUAN
|
1.1
Latar Belakang
Suatu tanaman dapat tumbuh
dan berkembang jika terjadi proses fisiologis pada tanaman itu sendiri. Dengan proses fisiologis inilah maka organ
tanaman satu persatu akan terbentuk, proses fisiologis ini diantaranya adalah proses fotosintesis. Proses fotosintesis suatu tanaman akan
berlangsung jika terdapat pigmen hijau daun (klorofil) di dalam daunnya dan
laju proses fotosintesis sangat dipengaruhi oleh kadar klorofil. Pigmen ini berfungsi sebagai
tempat metabolisme tanaman yang menghasilkan energi yang digunakan oleh tanaman
untuk tumbuh dan berkembang.
Klorofil adalah
kelompok pigmen
fotosintesis
yang terdapat dalam tumbuhan, menyerap cahaya merah, biru dan ungu, serta
merefleksikan cahaya hijau yang menyebabkan tumbuhan memperoleh ciri
warnanya. Terdapat dalam kloroplas dan
memanfaatkan cahaya
yang diserap sebagai energi untuk reaksi-reaksi cahaya dalam proses
fotosintesis. Klorofil A merupakan salah
satu bentuk klorofil yang terdapat pada semua tumbuhan autotrof. Klorofil B terdapat pada ganggang hijau
chlorophyta dan tumbuhan darat. Klorofil
C terdapat pada ganggang coklat Phaeophyta serta diatome Bacillariophyta. Klorofil D terdapat pada ganggang merah
Rhadophyta (Anonim, 2009).
1.2
Tujuan dan Kegunaan
Tujuan
praktikum Fisiologi Tumbuhan tentang Mengukur Kadar Klorofil dengan
Spektrofometer adalah menentukan kadar klorofil daun dengan menggunakan
spektrofotometer. Kegunaannya adalah untuk mengetahui kadar klorofil suatu daun
dengan menggunakan spektrofotometer.
II.
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Klorofil
Klorofil
adalah kelompok pigmen fotosintesis yang terdapat dalam tumbuhan, menyerap
cahaya merah, biru, dan ungu, serta merefleksikan cahaya hijau yang
menyebabakan tumbuhan memperoleh ciri warnanya. Terdapat dalam kloroplas dan memanfaatkan
cahaya yang diserap sebagai energy untuk reaksi-reaksi cahaya dalam proses
fotosintesis. Klorofil terbagi menjadi
empat bagian, yaitu klorofil A, klorofil B, klorofil C, dan klorofil D. Klorofil A merupakan salah satu bentuk
klorofil yang terdapat pada semua tumbuhan autrotof. Klorofil B terdapat pada ganggang hijau
chlorophyta dan tumbuhan darat. Klorofil
B terdapat pada ganggang coklat Phaeophyta serta diatome Bacillariopphyta. Dan klorofil D terdapat pada ganggang merah
Rhadophyta. Akibat adanya klorofil, tumbuhan dapat menyusun makanannya sendiri
dengan bantuan cahaya matahari. Timbuhan
yang sakit akibat ultra violet atau ozon akan memberikan gejala dengan turunnya
kadar klorofil. Dengan pengurangan kadar
klorofil dapat diketahui tingkat fisiologi tumbuhan termasuk aktivitas
fotosintesis, proses penuaan daun dan tingkat kesehatan tuumbuhan (Anonim
2004).
Klorofil
bermanfaat sebagai desinfektan dan antibiotik dalam perang dunia, sebelum
morfin ditemukan. Sampai hari inipun
masih digunakan untuk program pembersihan kotoran. Klorofil membersihkan jaringan-jaringan tubuh
yang sakit dan membuang keluar dari tubuh, beserta bakteri dan parasit yang ada
dalam jaringan yang sakit terbut.
Klorofil mengeluarkan racun-racun kimia sintesis macam borak dan
formalin. Kerjanya seperti memandikan
bagian dalam tubuh kita. Molekul
klorofil mempunyai ekor hydrophobik yang masuk ke dalam hidrokarbon
dinding-dinding sel tubuh dan menarik keluar dari dinding sel tesebut, seperti
sabun melepaskan minyak dari tangan kita.
Golongan hidrokarbon adalah pestisida, narkotika, perasa makanan dan
lain-lain yang dibuat di laboratorium dari bahan minyak bumi. Hati kita berfungsi membongkar sistesis kimia
tesebut dan mengeluarkannya dari dalam aliran darah kita. Karena itu Klorofil membantu kerja hati kita,
sehingga hati kita tak kerja terlalu berat (Sendi, 2006).
2.2 Spektrofotometer
Spektrofotometer
sesuai
dengan namanya adalah alat yang terdiri dari spektrometer dan fotometer. Spektrometer menghasilkan
sinar dari spektrum dengan panjang gelombang tertentu dan fotometer adalah alat
pengukur intensitas cahaya yang di transmisikan atau yang di absorpsi (Gandjar,
2003).
Spektrofotometer merupakan alat yang
digunakan untuk mengukur absorbansi
dengan cara melewatkan cahaya dengan panjang gelombang tertentu pada suatu
obyek kaca atau kuarsa
yang disebut kuvet. Sebagian dari cahaya tersebut akan diserap
dan sisanya akan dilewatkan. Nilai
absorbansi dari cahaya
yang dilewatkan akan sebanding dengan konsentrasi
larutan di dalam kuvet.
Spektrofotometer
dibagi menjadi dua jenis, yaitu spektrofotometer single-beam dan
spektrofotometer double-beam. Perbedaan kedua jenis spektrofotometer
tersebut hanya pada pemberian cahaya,
dimana pada single-beam, cahaya hanya melewati satu arah sehingga nilai
yang diperoleh hanya nilai absorbansi dari larutan yang dimasukan. Berbeda dengan single-beam, pada
spektrofotometer double-beam,
nilai blanko
dapat langsung diukur bersamaan larutan yang diinginkan dalam satu kali proses
yang sama. Prinsipnya adalah
dengan dengan adanya chopper
yang akan membagi sinar menjadi dua, dimana salah satu melewati blanko (disebut
juga reference beam) dan yang lainnya melewati larutan (disebut juga sample
beam). Dari kedua jenis
spektrofotometer tersebut, spektrofotometer double-beam memiliki
keunggulan lebih dibanding single-beam, karena nilai absorbansi
larutannya telah mengalami pengurangan terhadap nilai absorbansi
blanko. Selain itu, pada single-beam,
ditemukan juga beberapa kelemahan seperti perubahan intensitas
cahaya akibat fluktuasi voltase (Csuros. M, 1997).
2.3 Proses Terbentuknya Klorofil
Pada
tahun 1778,
Jan Ingenhousz,
dokter kerajaan Austria,
mengulangi eksperimen Priestley. Ia memperlihatkan bahwa cahaya matahari
berpengaruh pada tumbuhan sehingga dapat "memulihkan" udara yang
"rusak". Ia juga
menemukan bahwa tumbuhan juga 'mengotori udara
pada keadaan gelap sehingga ia lalu menyarankan agar tumbuhan
dikeluarkan dari rumah pada malam hari untuk mencegah kemungkinan meracuni
penghuninya (Salisbury, 1992).
Akhirnya
di tahun 1782,
Jean Senebier,
seorang pastor
Perancis,
menunjukkan bahwa udara yang “dipulihkan” dan “merusak” itu adalah karbon
dioksida yang diserap oleh tumbuhan dalam fotosintesis. Tidak lama kemudian, Theodore de Saussure
berhasil menunjukkan hubungan antara hipotesis Stephen Hale
dengan percobaan-percobaan "pemulihan" udara. Ia menemukan bahwa peningkatan massa tumbuhan
bukan hanya karena penyerapan karbon dioksida, tetapi juga oleh pemberian air.
Melalui serangkaian eksperimen
inilah akhirnya para ahli berhasil menggambarkan persamaan umum dari
fotosintesis yang menghasilkan makanan (seperti glukosa) (Salisbury, 1992)
Proses fotosintesis tidak
dapat berlangsung pada setiap sel,
tetapi hanya pada sel yang mengandung pigmen fotosintetik. Sel yang
tidak mempunyai pigmen fotosintetik ini tidak mampu melakukan proses
fotosintesis. Pada percobaan Jan Ingenhousz,
dapat diketahui bahwa intensitas
cahaya
mempengaruhi laju
fotosintesis pada tumbuhan.
Hal ini dapat terjadi karena
perbedaan energi
yang dihasilkan oleh setiap spektrum
cahaya.
Di samping adanya perbedaan energi
tersebut, faktor lain yang menjadi pembeda adalah kemampuan daun dalam menyerap
berbagai spektrum cahaya yang berbeda tersebut. Perbedaan kemampuan daun dalam menyerap
berbagai spektrum cahaya tersebut disebabkan adanya perbedaan jenis pigmen yang terkandung
pada jaringan
daun.
Di
dalam daun terdapat mesofil
yang terdiri atas jaringan
bunga karang dan jaringan pagar. Pada kedua jaringan ini, terdapat kloroplas
yang mengandung pigmen hijau klorofil. Pigmen ini merupakan salah satu dari pigmen
fotosintesis yang berperan penting dalam menyerap
energi matahari
(Gest. H, 2000).
III.
METODE PRAKTEK
3.1
Tempat dan Waktu
Praktikum
Fisiologi Tumbuhan tentang Mengukur Kadar Klorofil dengan menggunakan
Spektrofotometer bertempat di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian,
Universitas Tadulako, Palu. Dilaksanakan
pada hari Rabu 10 November 2010, pada pukul 14.00 WITA sampai selesai.
3.2
Alat dan Bahan
Alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah
spektrofotometer, sentrifuge, daun hijau segar dan daun kuning tua , mortal dan
pastel, alcohol 70 % dan labu ukur 100 ml.
3.3
Cara kerja
Terlebih dahulu menimbang daun sebanyak 0,1 gram,
kemudian merajangnya kecil-kecil dan mengekstraknya dalam mortal dengan 20 ml
alcohol 70%, serta menggerusnya sampai semua hancur dan semua klorofilnya
terlarut. Semua pigmen klorofil harus
terlarut sampai terlihat ampasnya yang putih.
Ampasnya tersebut kemudian diendapkan dengan sentrifugasi, setelah itu
mengambil supernatan dengan pipet secara perlahan dan terakhir mengukur
absorban dari larutan tersebut pada panjang gelombang 649 nm dan 665 nm.
IV.
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil
Berdasarkan
pengamatan yang telah dilakukan, maka diperoleh hasil sebagai berikut :
Tabel 7.
Kadar Klorofil a dan b pada Tanaman Coklat (Theobroma cacao) dan Nanas (Ananas comusus L.).
Perlakuan
|
Volume pelarut (ml)
|
Berat sampel (gr)
|
λ 665
|
λ 649
|
Klorofil a
|
Klorofil b
|
Daun coklat Tua
|
20
|
1
|
0,097
|
0,587
|
65,08
|
16,168
|
Daun nanas Muda
|
20
|
1
|
0,196
|
0,154
|
1798
|
2,484
|
Daun nanas Tua
|
20
|
1
|
0,150
|
0,140
|
1,199
|
2,472
|
4.2
Pembahasan
Berdasarkan
hasil pengamatan di atas dapat diketahui bahwa kadar klorofil A dan B pada daun
muda berbeda, karena kedua klorofil tersebut memiliki fungsi yang berbeda yang
mana klorofil A berfungsi sebagai pusat reaksi sedangkan klorofil B berfungsi
sebagai antena yang menangkap cahaya matahari, sehingga pada daun yang masih
muda kandungan klorofil A lebih banyak dibandingkan klorofil B karena daun muda
masih sangat aktif dalam melakukan proses metabolisme seperti fotosintesis.
Pada
pengamatan kadar klorofil daun tua dapat diketahui bahwa daun tua juga
mengandung klorofil A dan B dengan kadar yang berbeda pula, yaitu kadar
klorofil A lebih tinggi dibandingkan dengan kadar klorofil B.
Pada
pengamatan kadar klorofil pada daun nanas (Ananas
comusus L.) dan daun coklat (Theobroma cacao) yang sudah tua kadar
klorofil yang terkandung dalam daun sama dengan daun pada umumnya yaitu
klorofil A dan B dengan konsentrasi klorofil A lebih tinggi dibandingkan dengan
konsentrasi klorofil B dan hal ini juga dapat dilihat secara langsung dari
warna daun yang sudah mulai menguning yang menandakan bahwa klorofil daun sudah
mulai rusak bahkan mungkin sudah rusak.
Berdasarkan
hasil pengamatan di atas dapat diketahui bahwa kadar klorofil antara daun yang
masih muda dengan daun yang sudah tua sangat berbeda baik klorofil a maupun
klorofil b, dimana pada daun muda kadar klorofil lebih tinggi dibandingkan
dengan daun tua. Hal ini juga dapat
dilihat dari warna daunnya, dimana daun yang sudah tua berwarna kuning yang
menandakan pigmen hijau daunnya (klorofil) sudah berkurang atau rusak,
sedangkan daun muda berwarna hijau yang menandakan kadar pigmen hijau
(klorofil) daun masih sangat banyak sehingga proses fotosintesis pada daun muda
jauh lebih aktif dibandingkan pada daun yang sudah tua.
Klorofil
A, B dan krotenoid adalah pigmen pada tanaman berbiji. Klorofil terdapat dalam bentuk
butiran-butiran hijau di dalam kloroplas.
Klorofil A tampak hijau tua dan klorofil B tampak hijau cerah dan pigmen
karotenoid yang dalam bentuk karotinol atau xantofil umumnya berwarna kuning
pada tanaman (Purwoko, 1999).
Klorofil adalah
kelompok pigmen
fotosintesis
yang terdapat dalam tumbuhan, menyerap cahaya merah, biru dan ungu, serta
merefleksikan cahaya hijau yang menyebabkan tumbuhan memperoleh ciri
warnanya. Terdapat dalam kloroplas dan
memanfaatkan cahaya
yang diserap sebagai energi untuk reaksi-reaksi cahaya dalam proses
fotosintesis. Klorofil A merupakan salah
satu bentuk klorofil yang terdapat pada semua tumbuhan autotrof. Klorofil B terdapat pada ganggang hijau
chlorophyta dan tumbuhan darat. Klorofil
C terdapat pada ganggang coklat Phaeophyta serta diatosme Bacillariophyta. Klorofil D terdapat pada ganggang merah
Rhadophyta (Anonim, 2009).
Centrifuge adalah
alat untuk memutar sampel pada kecepatan tinggi, memaksa partikel yang lebih
berat terkumpul ke dasar tabung centrifuge. Ada beberapa klasifikasi centrifuge menurut jenisnya, antara lain general
purpose centrifuge, speciality
centrifuge, micro centrifuge.
Jenis-jenis rotor pada centrifuge adalah swing out / horizontal rotor, fixed angle rotor, drum rotor, winshield
rotor (Casanova, 2009).
V.
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan
hasil dan pembahasan di atas, maka dapat ditarik beberapa kesimpulan sebagai
berikut :
1.
Kadar klorofil pada setiap daun berbeda-beda
meskipun berasal dari satu jenis tanaman yang sama.
2.
Kadar klorofil daun yang masih muda lebih
banyak dibandingkan dengan kadar klorofil pada daun yang sudah tua.
3.
Banyak sedikitnya klorofil dalam daun secara
langsung dapat dideteksi melalui warna daun.
4.
Centrifuge adalah
alat untuk memutar sampel pada kecepatan tinggi, memaksa partikel yang lebih
berat terkumpul ke dasar tabung centrifuge.
5.2
Saran
Diharapkan semua para praktikan melengkapi alat dan
bahan yang akan digunakan dalam praktikum sebelum praktikum tersebut
dilaksanakan.
I.
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Suatu tanaman dapat tumbuh dan berkembang jika terjadi
proses fisiologis pada tanaman itu
sendiri. Dengan proses fisiologis inilah
maka organ tanaman satu persatu akan terbentuk, proses fisiologis ini diantaranya adalah proses fotosintesis. Proses fotosintesis suatu tanaman akan
berlangsung jika terdapat pigmen hijau daun (klorofil) di dalam daunnya dan
laju proses fotosintesis sangat dipengaruhi oleh kadar klorofil. Pigmen ini berfungsi sebagai
tempat metabolisme tanaman yang menghasilkan energi yang digunakan oleh tanaman
untuk tumbuh dan berkembang.
Selain menghasilkan metabolit primer, tumbuhan juga
menghasilkan metabolit sekunder. Metabolit sekunder dapat
berupa zat bioaktif dan pigmen. Pigmen merupakan
molekul khusus yang dapat
memunculkan warna.
Pigmen mampu menyerap cahaya matahari
dengan menyerap dan memantulkannya pada panjang gelombang tertentu. Molekul
pigmen yang berbeda akan memantulkan warna
tertentu pada panjang gelombang tertentu sehingga
menyebabkan reaksi kimia yang berbeda. Zat warna alami dapat diperoleh dari tanaman
atau hewan dan warna alami ini meliputi pigmen yang terdapa dalam bahan atau
terbentuk pada proses pemanasan, penyimpanan atau pemrosesan. Aman dan tak berefek samping jika dikonsumsi,
seperti klorofil, karetenoid, antosianin, brazilein, tanin dan lain-lain. Pigmen, sejak zaman dahulu, telah digunakan
sebagai zat pewarna alami dalam makanan, obat-obatan, dan kosmetika. Zat pewarna alami kini telah banyak
digantikan dengan pewarna buatan
yang memberikan lebih banyak kisaran warna yang telah
dibakukan. Hal ini karena
zat pewarna alami kurang stabil dan mudah mengalami perubahan baik fisik maupun
kimiawi. Stabilitas warna dari zat pewarna dipengaruhi
oleh cahaya, pH, oksidator, reduktor, dan surfaktan
Suparman, (Anonim, 2009).
Tumbuhan
dikatakan berwarna karena mengandung pigmen.
Pigmen yang dimiliki tumbuhan menunjukan warna yang berbeda-beda karena
perbedaan kemampuannya dalam meyerap dan menentukan cahaya terutama pada
panjang gelombang 380 nm-730 nm. Pigmen
yang paling besar didunia adalah klorofil yang berwarna hijau dan kedua adalah
carotenoid yang berwarna kuning-merah, pigmen-pigmen ini banyak dijumpai pada
daun dan dominant hampir disetiap tumbuhan (Anonim, 2000).
1.2
Tujuan dan Kegunaan
Tujuan
dari Praktikum fisiologi modul tentang
Pemisahan Pigmen Fotosintetik dengan Kromatografi Kertas ini
yaitu untuk mendeteksi jenis-jenis pigmen pada suatu daun tumbuhan. Sedangkan kegunaannya yaitu untuk dapat
mengetahui jenis-jenis pigmen pada suatu daun tumbuhan.
II.
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Pigmen Tumbuhan
Pigmen
adalah suatu zat yang mengubah warna cahaya yang dipantulkannya, sebagai hasil
dari absorpsi (penyerapan) terhadap cahaya dengan panjang gelombang
tertentu. Sebenarnya pigmen bisa
terdapat pada benda tak hidup juga bisa terdapat dalam tubuh makhluk
hidup. Di alam, ternyata beberapa zat
mampu secara selektif menyerap cahaya dengan panjang gelombang tertentu. Di dalam tubuh (bagian tubuh) yaitu di dalam
sel-selnya, makhluk hidup yang mempunyai warna tertentu itu terkandung zat
tertentu yang disebut sebagai pigmen tadi.
Banyak sekali jenis-jenis pigmen yang dihasilkan oleh makhluk
hidup. Berbagai bagian tubuh makhluk
hidup sangat kaya akan pigmen, misalnya mata, kulit, bulu, atau rambut, di mana
pada bagian-bagian tubuh itu kita dapat menemukan pigmen melanin yang terdapat
dalam sel khusus yang disebut kromatofor.
Pigmen melanin berfungsi untuk melindungi bagian-bagian tubuh tersebut
dari sinar ultraviolet (Suhadi,2006).
Zat
warna atau pigmen terdapat secara alami
dalam sel makhluk hidup terutama tumbuhan. Pigmen biasanya terdapat dalam vakuola atau organel
tertentu dalam sel tumbuhan. Fungsi pigmen bagi tumbuhan bermacam-macam. Pigmen pada bunga
berfungsi untuk menarik perhatian penyerbuknya selain dengan aromanya. Zat hijau daun atau
klorofil berfungsi menangkap energi cahaya dan
mengkonversinya menjadi energi kimia (Suhadi,2006).
Pigmen
dalam tumbuhan seringkali dipakai sebagai
pewarna alami untuk makanan dan obat- obatan agar lebih menarik. Namun
zat pewarna alami kurang stabil dan mudah
mengalami perubahan baik fisik maupun kimiawi. Stabilitas warna dari zat
pewarna dipengaruhi oleh cahaya, pH,
oksidator, reduktor, dan surfaktan (May,Paul
2007).
2.2 Klorofol A dan klorofil B
Klorofil
adalah katalisator fotosintesis yang penting dan terdapat semesta sebagai pigmen hijau dalam semua jaringan tumbuhan berfotosintesis. Zat ini terdapat dalam kloroplas
dalam jumlah nisbi banyak, sering terikat longgar dengan protein, tetapi mudah
diekstraksi ke dalam pelarut lipid seperti aseton dan eter
(Harborne, 1987).
Tumbuhan
tingkat tinggi mengandung dua macam klorofil yaitu klorofil a dan klorofil b. Klorofil a adalah suatu senyawa kompleks antara magnsium dengan
porfirin yang mengandung cincin siklopentanon (cincin
V). Keempat atom nitrogennya dihubungkan
secara ikatan. Koordinasi dengan ion Mg2+ membentuk senyawa
kompleks planar yang mantap. Rantai sampingnya yang bersifat hidrofob
adalah suatu terpenoid alkohol dan fitol yang dihubungkan
secara ikatan ester dengan gugus propionat dari cincin IV. Klorofil b adalah
klorofil kedua yang terdapat pada tumbuhan hijau. Klorofil b juga terikat pada protein didalam sel. Klorofil a dan klorofil b paling kuat menyerap cahaya
bagian merah dan ungu spektrum, cahaya hijau yang paling
sedikit diserap maka apabila cahaya putih menyinari struktur-struktur
yang mengandung klorofil seperti misalnya daun maka sinar hijau akan dikirimkan dan dipantulkan sehingga strukturnya tampak berwarna
hijau. Karoten termasuk ke dalam kromoplas yaitu plastida yang berwarna dan mengandung pigmen
selain klorofil (Hopkins,
1995).
Menurut
Dwidjoseputro (1980) klorofil terdapat sebagai butir-butir hijau di dalam
kloroplas. Pada umumnya kloroplas itu berbentuk oval, bahan dasarnya disebut
stroma, sedang butir-butir yang terkandung di dalamnya disebut
grana, pada tanaman tinggi ada 2
macam klorofil yaitu : Klorofil a berwarna hijau tua dengan
rumus C55 H72 O5 N4 Mg sedangkan klorofil b berwarna
hijau muda dengan rumus C55 H70 O6 N4 Mg. Karoten yang berwarna
kuning adalah pigmen lain yang terkandung dalam kloroplas. Cahaya yang diserap: Klorofil a menyerap cahaya biru-violet dan merah. Klorofil b menyerap
cahaya biru dan oranye dan memantulkan cahaya kuning-hijau.
III.
METODE PRAKTEK
3.1
Tempat dan Waktu
Praktikum
Fisiologi Tumbuhan tentang Pemisahan
Pigmen Fotosintetik dengan Kromatografi Kertas ini dilaksanakan di
Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian Universitas Tadulako, Palu. Pada hari Rabu 10
November 2010 pada pukul 14.00 WITA sampai selesai.
3.2
Alat dan Bahan
Alat
yang digunakan dalam Praktikum ini yaitu mortal dan pastel, cawan petri, labu
ukur 100 ml, kertas saring ukuran 3x15 cm..
Sedangkan bahan yang digunakan yaitu alkohol 70 %, daun coklat, daun
jagung dan daun nanas.
3.3
Cara Kerja
Cara
kerja dalam Praktikum ini yaitu pertama kami menggerus daun tersebut kemudian
menimbangnya sebanyak 1 gram, setelah itu mengekstrakkan dengan 25 ml alkohol
70 % sampai seluruh klorofil terlarut, lalu mengendapkan ampasnya dengan
menggunakan sentrifugasi atau didiamkan beberapa saat, lalu kami menuangkan
cairan tersebut kedalam cawan petri,
setelah itu mengambil kertas saring dan
memegang dengan penjepit dan menyelupkan bagian ujung yang lain, kemudian
membiarkan kertas saring tergantung untuk beberapa lama, hingga terlihat
pemisahan pigmen yang ada pada daun sampel, lalu kami memperhatikan pigmen yang
ada pada kertas saring tersebut, dan mengamatinya terdapat warna apa, jika
pigmen tersebut berwarna hijau berarti klorofil A, sedangkan jika berwarna
hijau muda berarti klorofil B dan carotenoid berwarna kuning.
IV.
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil
Berdasarkan pengamatan yang telah
dilakukan, maka dapat diperoleh hasil sebagai berikut :
Tabel 8. Pigmen Fotosintetik
Daun Nenas (Ananas comusus L.) dan
Daun Coklat (Theobroma cacao) pada Kertas Saring setelah 30 menit.
No
|
Jenis Daun
|
Pigmen yang nampak
|
Pigmen yang terkandung
|
1
2
3
4
|
Nenas Muda
Nenas
Tua
Coklat Tua
Coklat Muda
|
Hijau Jingga
Hijau Jingga
Hijau Biru
Hijau
|
Carotenoid
Carotenoid
Klorofil b
Klorofil a
|
4.2
Pembahasan
Berdasarkan
hasil pengamatan dapat diketahui bahwa pada daun tanaman nenas muda (Ananas comusus L.) diperoleh pigmen
hijau jingga yang mana pigmen hijau jingga merupakan salah satu pigmen pada
tanaman yang berperan sebagai pigmen fotosintetik. Berdasarkan warna pigmennya, maka klorofil
pada tanaman nenas termasuk karotenoid karena tanaman nenas juga termasuk dalam
tanaman CAM yang tidak menghendaki naungan
karena sangat menyukai cahaya.
Pigmen
karotenoid adalah salah satu pigmen yang terdapat di dalam kloroplas,
karotenoid terdiri atas dua golongan yaitu golongan karotin dan karotinol. Karotinol atau xantofil inilah yang
memberikan warna kuning pada tanaman (Mulyani, 2000).
Pada
pengamatan pigmen daun coklat (Theobroma
cacao) diperoleh pigmen klorofil a dengan memberikan warna kuning pada
daun. Meskipun daun tanaman coklat (Theobroma caco)setelah tua berwarna
hijau namun ketika masih muda daunnya berwarna kuning sehingga pigmen terbesar
yang terdapat dalam daun tanaman coklat adalah pigmen klorofil a dan b. Tanaman coklat juga termasuk dalam tanaman C4
yang selama masa hidupnya membutuhkan naungan, sehingga hal ini pula yang
menyebabkan tanaman ini kurang memiliki pigmen hijau daun.
Klorofi
itu fluoresesns, artinya dapat menerima sinar dan mengembalikannya dalam
gelombang yang berlainan, klorofil A tampak hijau tua tetapi jika sinar
direfleksikan tampak merah darah (Purwoko, 1999).
Tanaman
terbagi atas dua grup utama yaitu C3 dan C4 yang
dibedakan oleh cara mereka mengikat CO2 dari atmosfir dan produk
awal yang dihasilkan dari proses assimilasi.
Pada tanaman C3 enzim yang menyatukan CO2 dengan
RuBP (RuBP merupakan substrat untuk pembentukan karbohidrat dalam proses
fotosintesis) dalam proses awal assimilasi, juga dapat mengikat O2
pada saat yang bersamaan untuk proses fotorespirasi. Contoh tanaman C3 antara lain :
kedele, kacang tanah, kentang, sedang contoh tanaman C4 adalah
jagung, sorgum dan tebu.
Pada
tanaman C4 CO2 diikat oleh PEP (enzym pengikat CO2 pada
tanaman C4) yang tidak dapat mengikat O2 sehingga tidak
terjadi kompetisi antara CO2 dan O2. Lokasi terjadinya
assosiasi awal ini adalah di sel-sel mesofil. CO2 yang sudah terikat
oleh PEP kemudian ditransfer ke sel-sel "bundle sheath" (sekelompok
sel-sel di sekitar xylem dan phloem) dimana kemudian pengikatan dengan RuBP
terjadi (June, 2009).
V.
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan hasil dan pembahasan di
atas, maka dapat ditarik beberapa kesimpulan sebagai berikut :
1. Tanaman
yang mengandung pigmen klorofil A sebagian besar adalah tanaman C3. Sedangkan tanaman C4 sebagian besar
mengandung pigmen karotenoid.
2. Klorfofil
A memberikan warna hijau pada daun tanaman jagung sedangkan karotenoid
memberikan warna kuning pada daun tanaman coklat.
5.2
Saran
Diharapkan pada
praktikum-praktikum selanjutnya agar semua bahan yang diharuskan dalam modul
digunakan dalam praktikum sehingga praktikan mendapatkan informasi yang lebih
banyak tentang pigmen pada tumbuhan.
I.
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Imbibisi merupakan peyusupan atau peresapan air kedalam
ruang antar dinding sel, sehingga sehingga dinding selnya akan mengembang. Misalnya masuknya air pada biji saat
berkecambah dan biji kacang hijau yang direndam dalam air beberapa jam. Perkecambahan diawali dengan penyerapan air
dari lingkungan sekitar biji, baik tanah, udara maupun media lainnya. Perubahan yang teramati adalah membesarnya
ukuran biji yang disebut tahap imbibisi.
Biji menyerap air dari lingkungan sekelilingnya, baik dari tanah maupun
dari udara (dalam bentuk uap air atau embun), sehingga yang terjadi membesarnya
ukuran biji karena sel-sel embrio membesar dan biji yang melunak (Anonim,
2009).
Imbibisi
merupakan penyerapan air oleh imbiban.
Contohnya penyerapan air oleh benih, proses awal perkecambahan benih
yaitu dengan masuknya air ke dalam benih maka benih akan membesar kemudian
kulit benih pecah dan perkecambahan ditandai oleh keluarnya radikula dari dalam
benih (Indradewa, 2009).
1.2 Tujuan Dan Kegunaan
Tujuan
dari praktikum Fisiologi Tumbuhan tentang Imbibisi adalah mengetahui pengaruh
pada larutan terhadap proses imbibisi pada biji. Kegunaannya adalah kita dapat mengetahui
seberapa besar pengaruh suatu larutan terhadap proses imbibisi pada biji.
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Botani Kacang Hijau (Phaseolus radiatus)
Kacang hijau (Phaseolus
radiatus) termasuk kacang- kacangan dari famili papilionaceae dan dalam
bahasa inggris disebut Mungbean, green gram atau golden gram. Tanman ini
berbatang tegak dengan percabangan berasal dari batang utama. Batang bulat dan
berbulu dengan warna hijau dan berbulu dengan warna hijau atau ungu. Daunnya
trifoliate (daun terdiri dari tiga anak daun), letaknya berseling dan berwarna
hijau muda sampai hijau tua.
Bunga berwarna kuning tersusun dalam tandan, muncul pada
cabang dan batang dan mampu menyerbuk sendiri. Buah berupa polong berbentuk
silindris dengan panjang 6- 15 cm dan umumnya berbulu pendek. Pada waktu masih muda berwarna hijau dan
setelah tua berwarna hitam. Biji terdapat dalam polong dan umumnya berwarna
hijau, namun ada bebrapa jenis kacang hijau berwarna kuning, coklat atau hitam.
Kacang hijau dapat tumbuh di segala tipe tanah. Lahan
yang ideal untuk pertanaman yang ideal untuk pertanaman kacang hijau adalah
lahan dengan PH tanah sekitar 5,8 dan banyak mengandung bahan organic. Suhu
optimum untuk pertumbuhan kacang hijau berkisar pada 28- 30oC,
sehingga sesuai untuk dataran rendah hingga ketinggian 500 M di atas permukaan
laut. Tanaman ini juga cukup toleran
terhadap kekeringan dan masih dapat tumbuh baik pada daerah dengan kisaran
curah hujan 700-900 mm/th.
Klasifikasi Kacang Hijau (Phaseolus
radiatus L).
Kingdom : Plantae (Tumbuhan)
Subkingdom : Tracheobionta (Tumbuhan berpembuluh)
Super Divisi : Spermatophyta (Menghasilkan biji)
Divisi : Magnoliophyta (Tumbuhan berbunga)
Kelas : Magnoliopsida (berkeping dua / dikotil)
Sub Kelas : Rosidae
Ordo : Fabales
Kingdom : Plantae (Tumbuhan)
Subkingdom : Tracheobionta (Tumbuhan berpembuluh)
Super Divisi : Spermatophyta (Menghasilkan biji)
Divisi : Magnoliophyta (Tumbuhan berbunga)
Kelas : Magnoliopsida (berkeping dua / dikotil)
Sub Kelas : Rosidae
Ordo : Fabales
2.2 Imbibisi
Air
merupakan 85 – 95 % berat tumbuhan herba yang hidup di air. Dalam sel, air diperlukan sebagai pelarut
unsur hara sehingga dapat digunakan untuk mengangkutnya, selain itu air
diperlukan juga sebagai substrat atau reaktan untuk berbagai reaksi biokimia
misalnya proses fotosintesis dan air dapat menyebabkan terbentuknya enzim dalam
tiga dimensi sehingga dapat digunakan untuk aktifitas katalisnya. Tanaman yang kekurangan air akan menjadi
layu, dan apabila tidak diberikan air secepatnya akan terjadi layu permanen
yang dapat menyebabkan kematian (Rioardi, 2009).
Imbibisi
merupakan penyerapan air oleh imbiban.
Contohnya penyerapan air oleh benih, proses awal perkecambahan benih
yaitu dengan masuknya air ke dalam benih maka benih akan membesar kemudian
kulit benih pecah dan perkecambahan ditandai
oleh keluarnya radikula dari dalam benih (Indradewa, 2009).
III. METODE PRAKTIKUM
3.1 Tempat dan Waktu
Praktikum Fisiologi Tumbuhan modul Imbibisi dilaksanakan
di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian, Universitas Tadulako Palu,
dan dilaksanakan pada hari Rabu, tanggal 27 Oktober 2010, pada pukul 14.00 WITA
sampai selesai.
3.2 Alat dan Bahan
Alat
yang digunakan dalam Praktikum ini yaitu cawan Petri, timbangan. Sedangkan
bahan yang digunakan yaitu biji kering kacang hijau, larutan NaCl 4,o M; 2,0 M;
1 M; 0,8 M; 0,6 M; 0,4 M, aquades,
tissue.
3.3 Cara Kerja
Menyiapkan enam cawan petri dengan kertas saring
didalamnya, lalu mengisi cawan petri denga 5 ml larutan NaCl yang disediakan
dan aquades sebagai control, selanjutnya menimbang 20 biji kering, kemudian
mencatat berat sebagai berat awalnya dan menyimpan cawan selama 48 jam. Setelah 48 jam mengambil cawan dan
menimbangnya kembali sebagai berat kedua, kemudian presentase air yang masuk
kedalam biji pada setiap larutan terhadap berat kering mula-mula.
IV. HASIL DAN PEMBAHSAN
4.1 Hasil
Berdasarkan
pengamatan yang telah dilakukan, maka dapat diperoleh hasil sebagai berikut:
Tabel 5. Perubahan berat biji Kacang Hijau (Phaseolus radiatus) yang direndam
selama 48 Jam.
Konsentrasi NaCl
|
Berat awal (g)
|
Berat akhir (g)
|
Selisih (g)
|
% air yang masuk
|
Kontrol
4,0 M
2,0 M
1,0 M
0,8 M
0,6 M
0,4 M
|
1,55
1,53
1,55
1,11
1,19
1,38
1,61
|
1,45
1,44
1,50
1,12
1,21
1,41
1,36
|
0,1
0,09
0,05
0,01
0,02
0,03
0,25
|
6,45
5,88
3,33
0,90
1,68
2,17
15,52
|
4.2 Pembahasan
Dari
hasil pengamatan di atas dapat diketahui bahwa pada perendaman biji Kacang Hijau (Phaseolus radiatus) dalam larutan NaCl 0,4 M air terjadi proses
imbibisi yang cukup tinggi sehingga terdapat selisih yang besar antara berat
awal dan berat akhir. Hal ini disebabkan
karena kemungkinan pada konsentrasi ini larutan NaCl memiliki kemampuan
melakukan proses imbibisi ke dalam sel biji atau konsentrasi NaCl yang seimbang
dengan konsentrasi di dalam biji Kacang Hijau (Phaseolus radiatus). Hal ini
menandakan bahwa terjadi proses imbibisi dalam biji dan juga ditandai dengan
tingginya persentase air yang masuk ke dalam biji. Terutama pada biji yang direndam dengan
larutan sukrosa 0,6 M terjadi persentase masuknya air yang sangat tinggi yaitu
0,14 %.
Hasil
pengamatan imbibisi pada kacang hijau (Phaseolus
radiatus) sebelum direndam dalam larutan NaCL dengan konsentrasi 4,0 M; 2,0
M; 1,0 M; 0,8 M; 0,6 M; 0,4 M. dengan
berat awal 1,53 gr; 1,55 gr; 1,11 gr; 1,19 gr; 1,38 gr; 1,61 gr. Setelah direndam dalam larutan NaCL selama 48
jam. Berat biji pada kacang hijau (Phaseolus radiatus) mengalami perubahan
menjadi 1,44 gr; 1,50 gr; 1,12 gr; 1,21 gr; 1,41 gr; 1,36 gr.
Dari
pengamatan ini dapat diketahui bahwa berat biji kacang hijau (Phaseolus radiatus) mengalami perubahan berat pada konsentrasi NaCL 2,0; 1,0;
0,8; 0,6 serta penurunan berat pada konsentrasi 4,0 dan 0,4. Pada biji selalu bertambah berat disebabkan
oleh penyerapan air oleh permukaan yang menyebabkan kacang hijau mengembang
serta beratnya bertambah setelah menyerap air, selain itu semakin tinggi suatu
konsentrasi larutan maka kemampuan biji untuk menyerap suatu larutan akan
semakin besar, sehingga air akan semakin cepat bergerak kedalam biji
dikarenakan konsentrasi potensial air larutan dalam biji rendah dibandingkan
dengan potensial air larutan tersebut sehingga berat biji menjadi bertambah
(Anwar, 2008)
Pada pengamatan
perendaman biji Kacang Hijau (Phaseolus
radiatus) dengan air (kontrol), persentase masuknya air ke dalam biji 0,8
%. Sehingga dapat disimpulkan bahwa
proses imbibisi air ke dalam biji sangat rendah. Hal ini dapat disebabkan karena kurangnya
daya tarik menarik antara air dengan biji.
Imbibisi merupakan proses masuknya air karena
adanya perbedaan konsentrasi, yaitu dari konsentrasi tinggi ke konsentrasi
rendah. Imbibisi pada tumbuhan umumnya
terjadi pada proses penyerapan unsur-unsur yang dibutuhkan oleh tumbuhan
khususnya air.
Air
merupakan 85 – 95 % berat tumbuhan herba yang hidup di air. Dalam sel, air diperlukan sebagai pelarut
unsur hara sehingga dapat digunakan untuk mengangkutnya, selain itu air
diperlukan juga sebagai substrat atau reaktan untuk berbagai reaksi biokimia
misalnya proses fotosintesis dan air dapat menyebabkan terbentuknya enzim dalam
tiga dimensi sehingga dapat digunakan untuk aktifitas katalisnya. Tanaman yang kekurangan air akan menjadi
layu, dan apabila tidak diberikan air secepatnya akan terjadi layu permanen
yang dapat menyebabkan kematian (Rioardi, 2009).
Imbibisi yaitu
peristiwa meresapnya air di antara
partikel dinding, sehingga
dinding selnya mengembang. Imbibisi
terjadi pada benda-benda yang permukaannya
terdiri dari bagian-bagian
yang dapat mengikat molekul
air, sehingga bagian-bagian tersebut
menjadi renggang dan mengembang (Dara,
2009).
V.
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan
Berdasarkan
hasil dan pembahasan di atas, maka dapat ditarik beberapa kesimpulan sebagai
berikut :
1. Semakin
tinggi konsentrasi larutan yang digunakan maka proses imbibisi pada biji tidak
akan terjadi.
2. Proses
imbibisi dapat terjadi jika ada gaya tarik menarik antara biji dengan larutan
yang digunakan.
5.2 Saran
Saran
dari praktikan diharapkan pada praktikum selanjutnya agar dalam pelaksanaan
praktikum lebih disiplin dan tepat waktu agar hasil yang diperoleh lebih
maksimal.
I.
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Suatu tanaman dapat tumbuh dan berkembang jika terjadi
proses fisiologis pada tanaman itu
sendiri. Dengan proses fisiologis inilah
maka organ tanaman satu persatu akan terbentuk, proses fisiologis ini diantaranya adalah proses fotosintesis. Proses fotosintesis suatu tanaman akan
berlangsung jika terdapat pigmen hijau daun (klorofil) di dalam daunnya dan
laju proses fotosintesis sangat dipengaruhi oleh kadar klorofil. Pigmen ini berfungsi sebagai
tempat metabolisme tanaman yang menghasilkan energi yang digunakan oleh tanaman
untuk tumbuh dan berkembang.
Semua proses fisiologi di dalam jaringan tanaman tidak
akan terjadi tanpa adanya air yang berperan penting dalam proses tersebut. Selama pertumbuhan tanaman air memiliki
peranan penting di antaranya berperan sebagai pelarut bahan-bahan organik,
bahan utama proses fotosintesis dan lain-lain.
Jika tanaman mengalami stress air, maka pertumbuhan dan perkembangan
tanaman tersebut tidak akan berjalan normal.
Air masuk ke dalam sel tanaman melalui proses difusi, yang mana proses
difusi ini terjadi karena perbedaan konsentrasi, yaitu konsentrasi di dalam sel
lebih rendah di bandingkan konsentrasi di luar sel.
Sel
tumbuhan dapat mengalami kehilangan air yang besar jika potensial air di luar
sel lebih rendah dibandingkan dengan potensial air di dalam sel, sehingga akan
mengakibatkan volume isi sel akan menurun dan tidak akan mampu mengisi seluruh
ruang yang telah dibentuk oleh sel tersebut (Taji, Kumar dan Lakshmanan, 2002).
1.2
Tujuan dan Kegunaan
Tujuan
dari praktikum Fisiologi Tumbuhan tentang Pengaruh Zat Pengatur Tumbuh Terhadap
Perkecambahan Biji adalah untuk mengetahui pengaruh berbagai zat pengatur
tumbuh pada perkecambahan biji.
Kegunaannya adalah kita dapat mengetahui pengaruh dari berbagai zat
pengatur tumbuh terhadap perkecambahan biji.
II.
TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Zat Pengatur Tumbuhan
Zat
pengatur tumbuh adalah senyawa organic kompleks alami yang di sintesis oleh
tanaman tingkat tinggi, yang berpengaruh pada pertumbuhan dan perkembangan
tanaman. Dalam kultur jaringan, ada dua golongan zat pengatur
tumbuh yang sangat penting adalah sitokinin dan auksin. Zat pengatur tumbuh ini mempengaruhi pertumbuhan dan
morfogenesis dalam kultur sel, jaringan dan organ. Interaksi dan perimbangan
antara zat pengatur tumbuh yang diberikan dalam media dan yang diproduksi oleh
sel secara endogen, menentukan arah perkembangan suatu kultur. Penambahan
auksin atau sitokinin eksogen, mengubah level zat pengatur tumbuh endogen sel.
Level zat pengatur tumbuh endogen ini kemudian merupakan trigerring factor
untuk proses-proses yang tumbuh dan morfogenesis (Taji, Kumar dan Lakshmanan,
2002).
2.2
Caumarin
Caumarin
merupakan senyawa kimia, sebuah toksin yang ditemukan pada banyak tanaman,
terutama dalam konsentrasi tinggi pada vanili rumput, manis rumput dan mullein,
yang memiliki wangian manis, mudah diakui sebagai jejak yang baru dan telah
digunakan dalam berfumes sejak 1882.
Memiliki nilai klinis medis sebagai pelopor untuk beberapa
anticoagulanst, terutama warfarin dan digunakan sebagai media untuk mendapatkan
dalam beberapa dyelaser (Heddy, 1999).
Kumarin yang digunakan dalam industri farmasi sebagai molekul
prekursor dalam sintesis sejumlah obat-obatan antikoagulan sintetik mirip
dengan dicoumarol, terutama warfarin (yang memiliki nama merek generik
Coumadin) dan beberapa bahkan lebih kuat rodentisida yang bekerja dengan mekanisme
antikoagulan yang sama . Lihat 4-hydroxycoumarin untuk diskusi dan daftar kelas
ini obat. Semua agen secara historis ditemukan oleh menganalisis penyakit
semanggi manis (Duarte,
2003).
2.3
2,4-D
Investigasi
dilakukan untuk menentukan kelayakan rendah phosphorimetric
analisis suhu 2,4-D, 2-naphthoxyacetic asam, dan
silvex di EPA pelarut. Puncak eksitasi
dan emisi panjang gelombang ditunjukkan di atas
maxima spektra. Untuk setiap spektrum eksitasi,
panjang gelombang emisi monokromator dial telah disesuaikan
untuk memberikan emisi total phosphorimetric. Spektrum emisi kemudian
dicatat dengan eksitasi puncak panjang gelombang
yang diperoleh dari spektrum eksitasi.
Menggunakan puncak eksitasi dan emisi
gelombang, grafik kalibrasi awal untuk setiap pestisida
diperoleh. Ini menunjukkan grafik
kalibrasi metode yang sensitif untuk setiap
pestisida dapat dikembangkan.
Turunan herbisida fenoksi, termasuk 2,4-dichlorophenoxyacetic
acid
(2,4-D), yang digunakan secara luas sebagai herbisida selektif gulma terhadap luas daun
pada tanaman sereal dan padang
rumput dan non-tanaman tanah di Negara ini. Prinsip aktif 2,4-D dirumuskan herbisida pada tanaman
manufaktur lokal. Walaupun 2,4-D dan nya derivatif tampaknya tidak
menimbulkan risiko besar bagi masyarakat umum, mereka mungkin resiko
mutagenisitas, kanker potensi bahaya dan fetotoxicity untuk formulator
herbisida pertanian spraymen dan aplikator
yang langsung terkena bahan kimia
(Ross et al 1977;. Seiler 1978; Elina 1979).
Tingkat
bentuk asam bebas dari 2,4-D dalam urin dapat digunakan sebagai indeks pajanan terhadap kelompok herbisida 2,4-D. Dengan demikian, prosedur yang cepat,
sensitif dan sederhana yang diperlukan untuk deteksi dalam urin manusia dari asam bebas dalam rangka mencapai
pemantauan toksikologi dan lingkungan dari senyawa. Tidak hanya penelitian ini menjelaskan sebuah
metode gas kromatografi untuk penentuan jumlah jejak
2,4-D dalam urin manusia setelah metilasi tetapi juga penerapan metode untuk pengukuran pajanan terhadap kelompok
herbisida 2,4-D (Scoggins, 1969).
2.4
Giberilin
Giberelin
merupakan senyawa isoprenoid, khususnya berupa diterpen yang disintesis dari
unit asetat asetil koenzim A melalui asam mevalonat. Granilgranil prifosfat yaitu senyawa
20-karbon, bertindak sebagai donor bagi semua atom karbon pada giberelin. Senyawa itu diubah menjadi kopalilpirofosfat
yang memiliki sistim dua cincin, dan senyawa terakhir tersebut kemudian diubah
menjadi kauren yang mempunyai sistim empat cincin. Perubahan kauren lebih lanjut disepanjang
lintasan meliputi oksidasi yang terjadi diretikulum endoplasma, menghasilkan
senyawa-senyawa kaurenol (jenis alcohol) kaurenal (jenis aldehid) dan asam kaurenoat
setiap senyawa teroksidasi lebih lanjut.
Zat penghambat pertumbuhan tertentu yang diperdagangkan, yang menghambat
pemanjangan batang dan meyebabkan pengkerdilan, bekerja antara lain dengan
menghambat sintesis giberelin (Lukman, R 1999).
2.5
Urea
Urea juga disebut karbamid, adalah sebuah senyawa
kimia organik yang pada dasarnya merupakan limbah yang dihasilkan ketika tubuh
memetabolisme protein. Ini adalah
senyawa tidak hanya diproduksi oleh manusia tetapi juga oleh mamalia lainnya,
serta amfibi dan beberapa ikan. Urea
adalah senyawa alami pertama yang disintesis secara buatan menggunakan
anorganik senyawa-sebuah terobosan ilmiah. Urea ditemukan pada
tahun 1773 oleh kimiawan Perancis Hillaire Rouelle. Pada tahun 1828, hanya 55 tahun setelah
penemuannya, menjadi senyawa organik pertama yang sintetik dirumuskan, kali ini
oleh seorang kimiawan Jerman bernama Friedrich Wöhler, salah satu pelopor kimia
organik.
Urea
atau karbamid merupakan senyawa organik dengan rumus kimia (NH2) 2CO. Molekul ini memiliki dua amine (-NH2)
kelompok bergabung oleh karbonil (C=O) kelompok fungsional. Urea melayani peran
penting dalam metabolisme nitrogen yang mengandung senyawa oleh hewan dan
merupakan zat yang mengandung nitrogen utama dalam urin mamalia. Ini adalah
padat, tidak berwarna, dan tidak berbau (walaupun amonia yang memberi dari
dalam kehadiran air, termasuk uap air di udara, memiliki bau yang kuat). Hal ini sangat larut dalam air dan tidak
beracun. Dilarutkan dalam air yang tidak
asam atau basa. Tubuh menggunakan dalam banyak proses, terutama ekskresi
nitrogen. Urea yang banyak digunakan
dalam pupuk sebagai sumber nitrogen nyaman.
Urea juga merupakan bahan baku penting bagi industri kimia. Sintesis dari senyawa organik oleh Friedrich
Wöhler pada tahun 1828 dari pendahulu anorganik merupakan tonggak penting dalam
pengembangan kimia organik, karena menunjukkan untuk pertama kalinya bahwa
sebuah molekul yang ditemukan dalam organisme hidup dapat disintesis di
laboratorium tanpa bahan awal biologi (Jozep, 2002).
III.
METODE PRAKTEK
3.1
Tempat dan Waktu
Praktikum
Fisiologi Tumbuhan tentang Pengaruh Zat Pengatur Tumbuh (ZPT) Terhadap
Perkecambahan Biji bertempat di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian, Universitas Tadulako,
Palu. Dilaksanakan pada hari Rabu 03 November 2010 pada pukul 14:00 WITA
sampai selesai.
3.2
Alat dan Bahan
Alat
yang digunakan dalam Praktikum ini yaitu cawan petri, tissue. Sedangkan bahan yang digunakan yaitu biji
kacang hijau, larutan caumarin 0,5 ppm, 7,0 ppm 2,4-D, 0,02 ppm giberelin, Aquades, 12, ppm urea.
3.3
Cara Kerja
Cara
kerja dalam Praktikum ini yaitu pertama kami menyiapkan cawan petri sebanyak 1
buah perkelompok kemudian dilapisi
dengan tissue dan kami mengisi dengan biji Kacang Hijau sebanyak 25 biji pada
masing-masing cawan tersebut, kemudian kami memberinya pada masing-masing cawan
dengan larutan yang berbeda-beda sesuai dengan larutan yang digunakan yaitu
larutan sukrosa dengan konsentrasi 10%. Lalu kami meyimpannya di tempat yang
gelap, dan mengamatinnya setiap hari dan menghitung presentase biji kacang yang
berkecambah, dan mengeluarkannnya biji kacang tersebut yang sudah berkecambah
lalu membandingkan hasil dari semua perlakuan tersebut.
IV.
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil
Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan, maka dapat
diperoleh hasil tumbuh sebagai
berikut :
Tabel 6. Presentase biji kecambah kacang hijau (Phaseolus radiates L.) pada beberapa zat pengatur.
Hari
|
Jumlah Biji
|
Jumlah Biji oleh Larutan
|
||||
0,5 Caumarin
|
7,0 ppm 2,4-D
|
0.01 ppm Giberelin
|
12,5 ppm urea
|
Control (Aquades)
|
||
I
II
III
|
25
25
25
|
-
-
-
|
-
-
-
|
5
25
25
|
6
25
25
|
-
-
-
|
4.2
Pembahasan
Dari
hasil pengamatan di atas dapat diketahui bahwa pada saat biji kacang hijau (Phaseolus radiatus) yang direndam dengan
larutan urea, 2,4-D, caumarin, giberelin dan aqudes tidak mengalami proses
perkecambahan dalam kurun waktu empat hari perendaman. Hal ini disebabkan karena kemungkinan larutan
tersebut mengalami penguapan pada saat penyimpanan, disebabkan tissue yang
keluar dari cawan petri sehingga biji kacang hijau tidak terendam lama dan pada
akhirnya biji tersebut tidak dapat berkecambah karena kurangnya air yang ada di
sekitar biji tersebut atau dapat juga disebabkan kemungkinan larutan yang
digunakan sudah tidak efisien digunakan atau sudah rusak.
Pada
waktu terjadi proses imbibisi, kandungan air meningkat mula-mula cepat kemudian
lebih lambat dan jaringan bermetabolisme secara aktif, yaitu dengan adanya air
enzim yang telah ada diaktifkan kembali, protein dan enzim yang baru di
sintesis untuk mencerna dan menggunakan berbagai bahan cadangan yang
tersimpan. Pada saat pertumbuhan
tersebut membutuhkan pasokan air dan zat gizi secara terus menerus (Wuryan,
2009).
Perkecambahan
diawali dengan penyerapan air dari
lingkungan sekitar biji, baik tanah, udara, maupun media lainnya. Perubahan yang teramati adalah membesarnya
ukuran biji yang disebut tahap imbibisi.
Biji menyerap air dari lingkungan sekelilingnya, baik dari tanah maupun
udara (dalam bentuk embun atau
uap air). Efek yang terjadi adalah
membesarnya ukuran biji karena sel embrio membesar dan biji melunak (Anonim,
2009).
Gibberellin
sebagai hormon tumbuh pada tanaman sangat berpengaruh pada sifat genetik,
pembuangan, penyinaran, partohenocarpy, mobilisasi karbohidrat selama
perkecambahan (germination) dan aspek fisiologi kainnya. Gibberellin
mempunyai peranan dalam mendukung perpanjangan sel, aktivitas kambium, mendukung pembentukan RNA
baru serta sintesa protein (Anonim, 2009).
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan hasil yang diperoleh, maka dapat ditarik
beberapa kesimpulan sebagai berikut :
1.
Perkecambahan
biji hanya akan terjadi jika terdapat air atau hormon tumbuh di sekeliling biji
selama proses perkecambahan.
2.
Meskipun
telah diberikan hormon tumbuh, namun jika hormon tersebut telah rusak maka
tidak akan memberikan respon terhadap perkecambahan biji.
3.
Dapat diketahui bahwa pada saat biji kacang
hijau (Phaseolus radiatus) yang
direndam dengan larutan urea, 2,4-D, caumarin, giberelin dan aqudes tidak
mengalami proses perkecambahan dalam kurun waktu empat hari perendaman.
4.
Beredasarkan
letak kotiledonnya, perkecambahan dapat dibedakan menjadi epogeal dan hipogeal.
5.2
Saran
Sangat
diharapkan ketenangan dari para praktikan pada saat praktikum sedang
berlangsung, hal ini mengingat pentingnya kedisiplinan saat menjalani praktikum
sehingga praktikum dapat berjalan dengan hasil yang baik.
I.
PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang
Fisiologi
tumbuhan merupakan salah satu cabang biologi yang mempelajari tentang proses
metabolisme yang terjadi didalam tumbuhan yang meyebabkan tumbuhan tersebut
dapat hidup. Salah satu faktor terjadinya proses metabolisme tersebut dapat
berlangsung dengan laju yaitu karena lingkungan mikro di sekitar tumbuhan
tersebut. Dengan mempelajari tentang
fisiologi tumbuhan ini kita dapat mengetahui bagaimana sinar matahari
dimanfaatkan oleh tumbuhan untuk menghasilkan karbohidrat dari bahan baku anorganik berupa air
dan karbodioksida, dengan adanya fisiologi tumbuhan ini kita juga dapat
mengetahui bahwa dalam reaksi biokimia meyebabkan terjadinya membuka dan
menutupnya stomata. Selain itu juga ada
proses imbibisi dalam suatu tanaman, imbibisi merupakan proses penyerapan air
oleh permukaan zat-zat hidrofilik seperti protein, pati, selulosa dan
lain-lainnya. Selain itu juga hormon
adalah salah satu zat pengantur tumbuh-tumbuhan, dan merupakan senyawa kimia
yang dalam konsentrasi rendah berperan aktif dalam mengontrol proses
pertumbuhan dan perkembangan tumbuhan (Chawla, 2002).
Menurut
Trigiano (2000), Indole Acetic-Acid (IAA) merupakan salah satu jenis auksin
yang secara alami digunakan untuk pembentukan kalus. IAA memiliki sifat kimia lebih stabil dan
mobilitasnya di dalam tanaman rendah.
Sifat-sifat ini yang menyebabkan IAA dapat lebih berhasil karena sifat
kimianya yang mantap dan pengaruhnya yang lebih lama. Komposisi auksin dan sitokinin dalam media
kultur invitro memainkan peranan penting dalam induksi dan regenerasi
kalus menjadi tunas (Kadir, 2007).
1.2
Tujuan dan Kegunaan
Tujuan
dari praktikum Fisiologi Tumbuhan tentang Pengaruh Auksin Terhadap Pemanjangan
Jaringan adalah untuk mengetahui pengaruh Auksin (IAA) terhadap perkecambahan
biji. Kegunaannya adalah kita dapat
mengetahui seberapa besar pengaruh auksin alami (IAA) dalam proses
perkecambahan biji.
II.
TINJAUAN PUSTAKA
2.1
Auksin
Istilah
Auksin berasal dari bahasa yunani auxein, meningkatkan. Auksin ini merupakan senyawa yang belum dapat
dicirikan mungkin meyebabkan pembengkokan koleoptil oat ke arah cahaya. Koleoptil yang terjadi akibat terpacunya
pemasnjangan pada sisi yang ditempeli potongan akar. Pengaruh Auksin terhadap pemanjangan dapat
dipelajari dari hasil berdasarkan penelitian pada ujung koleoptil kecambah
sejenis gandum. Sebelumnya sudah lama
diketahui bahwa ujung koleoptil itu penting untuk pemanjangan koleoptil dan
ujung bawah batangnya, bila ujung dipotong pertumbuhan akn terhambat beberapa
jam, dan akan tumbuh lagi apabila ujung
batang yang terpotong
itu telah memproduksi
auksin kembali (Dwidjoseputro, 1986).
Auksin
adalah kelas substansi pertumbuhan tanaman dan morphogens (sering disebut
phytohormone atau hormon tanaman).
Auksin memiliki peran penting dalam koordinasi banyak pertumbuhan dan
proses perilaku dalam siklus hidup tanaman. Auksin dan peran mereka dalam
pertumbuhan tanaman pertama kali diungkapkan oleh Frits ilmuwan Belanda.
Hal ini
menunjukan bahwa terdapat zat yang diproduksi dibagian ujung dan bergerak ke
bawah yang mempengaruhi pertumbuhan, zat ini oleh kogl dinamakan Auksin dari
bahasa latin yaitu auksin yang berarti tumbuh (Suwasono,
1983).
2.2
IAA (Indole Acetic Acid)
Asam
indole acetic acid, juga dikenal sebagai IAA, adalah senyawa heterosiklik yang
phytohormone yang disebut auksin. Ini
padat berwarna mungkin adalah auksin tanaman yang paling penting. Molekul ini berasal dari indol, mengandung
kelompok karboksimetil (asam asetat). IAA diproduksi dalam sel-sel di puncak (tunas) dan daun muda
tanaman. Sel tumbuhan terutama
mensintesis IAA dari tryptophan tetapi juga dapat menghasilkan secara mandiri
dari tryptophan. Kimia, dapat disintesis dengan
reaksi indol dengan asam glikolat dengan adanya dasar pada 250 ° C.
IAA
memiliki efek yang berbeda, seperti semua auksin lakukan, seperti merangsang
pemanjangan sel dan pembelahan sel dengan semua hasil berikutnya untuk
pertumbuhan dan perkembangan tanaman.
Ada yang lebih murah dan metabolik stabil analog auksin sintetis di
pasar untuk digunakan dalam hortikultura, seperti asam indole-3-butirat (IBA)
dan asam 1-naphthaleneacetic (NAA).
Studi
IAA tahun 1940-an menyebabkan perkembangan herbisida fenoksi asam
2,4-ichlorophenoxyacetic (2,4-D) dan asam 2,4,5-triklorofenoksiasetik
(2,4,5-T). Seperti IBA dan NAA, 2,4-D dan 2,4,5-T metabolik dan lingkungan yang lebih stabil
analog IAA. Namun, ketika disemprotkan pada tanaman dicot luas daun, mereka
mendorong cepat, pertumbuhan yang tidak terkendali, akhirnya membunuh mereka.
Pertama kali diperkenalkan pada tahun 1946, ini herbisida yang digunakan secara
luas dalam pertanian pada pertengahan 1950-an (M. S.
Saleh, 2003).
III.
METODE PRAKTEK
3.1
Tempat dan Waktu
Praktikum
Fisiologi Tumbuhan tentang Pengaruh Auksin Terhadap Pemanjangan Jaringan ini
dilaksanakan di Laboratorium Hortikultura, Fakultas Pertanian Universitas
Tadulako, Palu. Pada hari Rabu 03
November 2010 pukul 14.00 WITA sampai
selesai.
3.2
Alat dan Bahan
Alat yang digunakan dalam Praktikum ini yaitu silet/cutter. Sedangkan bahan yang digunakan yaitu kecambah
Kacang Hijau ( Phaseolus radiates L) yang berumur 5 hari (dikecambahkan di tempat
gelap),aquades , larutan IAA 0,01 ppm; 0,03 ppm; 0,05 ppm; 0,07 ppm; 0,09 ppm.
3.3
Cara Kerja
Cara
kerja dalam Praktikum ini yaitu pertama kami membuat potongan hipokotil
sepanjang 3 cm, kemudian kami menyiapkan larutan masing-masing 5 ml pada cawan
petri dan menggunakan aquades sebagai kontrol, setelah itu kami memasukkan
masing-masing 5 potongan hipokotil pada larutan yang disediakan, selanjutnya
menyimpannya di tempat gelap selama 48 jam, kemudian kami mengukurnya setiap
hari dan membandingkan dari semua perlakuan yang ada.
IV.
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1
Hasil
Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan, maka dapat
diperoleh hasil sebagai berikut :
Tabel 7.
Pengaruh Auksin Terhadap Pemanjangan Jaringan.
Perlakuan
|
Panjang
awal (cm)
|
Panjang
akhir (cm)
|
Selisih
|
Kontrol
IAA
0,01 ppm
IAA
0,03 ppm
IAA
0,05 ppm
IAA
0,07 ppm
IAA
0,09 ppm
|
3
3
3
3
3
3
|
2
3,1
3,4
2,9
3,3
3,6
|
1
0,1
0,4
0,1
0,3
0,6
|
4.2
Pembahasan
Berdasarkan hasil pengamatan dapat
diketahui bahwa pada percobaan perendaman hipokotil kacang hijau (Phaseolus radiatus) dengan menggunakan
larutan IAA 0,01 ppm, 0,03 ppm, 0,05 ppm, 0,07 ppm dan 0,09 ppm terjadi
penyusutan panjang yang direndam selama 48 jam.
Hal ini disebabkan karena kemungkinan konsentrasi dari larutan tersebut
tinggi sehingga peranannya dalam merespon pemanjangan jaringan tidak fleksibel
bahkan dapat merusak hormon yang ada dalam hipokotil kacang hijau, atau
kemungkinan lainnya adalah kurang ketelitian dalam proses pengukuran hipokotil,
sebab hormon berfungsi untuk meningkatkan perkembangan suatu organisme dan
berperan aktif dalam perpanjangan jaringan.
Dari hasil studi tentang pengaruh auksin
(IAA) terhadap perkembangan sel menunjukkan bahwa auksin dapat meningkatkan
tekanan osmotik, meningkatkan permeabilitas sel terhdap air, meningkatkan
sintesis protein, meningkatkan plastisitas dan pengembangan dinding sel (Mukhtarom, 2009).
Hormon yang berasal dari bahasa Yunani yaitu Hormaein ini mempunyai arti merangsang, membangkitkan atau
mendorong timbulnya suatu aktifitas biokimia sehingga fito-hormon tanaman dapat
didefinisikan sebagai senyawa organik tanaman yang bekerja aktif dalam jumlah
sedikit, ditransportasikan ke seluruh bagian tanaman sehingga dapat
mempengaruhi pertumbuhan atau proses-proses fisiologi tanaman. Hormon tumbuh
dapat berperan aktif dalam merespon pemanjangan jaringan jika berada pada
konsentrasi yang rendah, tetapi jika berada dalam konsentrasi yang tinggi selain
peranannya berkurang juga dapat berperan sebagai pestisida (Anonim, 2008).
V.
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1
Kesimpulan
Berdasarkan
hasil dan pembahasan di atas, maka dapat diambil beberapa kesimpulan sebagai
berikut :
1.
Hormon
tumbuhan akan berperan aktif dalam merangsang pemanjangan jaringan jika berada
pada konsentrasi rendah.
2.
Hipokotil
kacang hijau (phaseolus radiates) mengalami perpanjangan jaringan pada saat
perendaman dengan IAA 0,01 ppm
5.2
Saran
Saran dari praktikan diharapkan pada praktikum-praktikum
selanjutnya lebih teliti dalam mengukur berat bahan, agar hasil yang diperoleh
lebih baik dan maksimal agar tujuan dapat tercapai.
DAFTAR PUSTAKA
______, 2005.
Pengukuran Potensial
Air Pada Jaringan
Tanaman.
______, 2008. Sedikit
Tentang Zat Pengatur Tumbuh. http://yoxx.blogspot.com. Diakses pada tanggal 18 November 2010.
November 2009.
______, 2009. Klorofil.
http://id.wikipedia.org. Diakses pada tanggal 18 November 2010.
tanggal 15 November 2010.
______, 2009. Kacang Hijau (Phaseolus
radiatus). "http://id.wikipedia.org.
Di akses pada tanggal 14 November 2010.
November 2009.
Basri Z., 2004. Kultur
Jaringan Tanaman. Universitas
Tadulako Press. Palu.
Chawla, 2000. Manfaat
Zat Pengatur Tumbuh. Nuansa Graha,
Jakarta.
Chawla, 2002. http:/yoxx.blogspot.com/sedikit-tentang-zat-pengatur-tumbuh.html
diakses pada tanggal 01 November 2010.
Copyright, 2007. Learning.Unram.ac.id/pengatur%20Tumbuh. htm. Diakses
pada tanggal 02 November 2010.
Christie. Jennifer, 2009. Zat
Pengatur Tumbuh (ZPT). Bunga Melati,
Bandung.
15 November 2010.
Dalimunthe A., 2004Stomata Peranannya Dalam Metabolisme. http://library.usu.ac.id. Di akses tanggal 15 November 2010.
Damayanti F., 2007. Analisis
Jumlah Kromosom dan Anatomi Stomata Pada Beberapa Plasma Nutfah Pisang (Musa
sp.) Asal Kalimantan Timur. http://bioscientiae.unlam.ac.id. Di akses pada tanggal 15 November 2010.
Dara, 2009. Pengangkutan
Pada Tumbuhan. http://dara9.files.wordpress.com. Di akses pada tanggal 15 November
2010.
Filter, 1989. Fisiologi lingkungan Tumbuhan. Gadja Mada
Universitas Press, Yogyakarta.
Heddy, S., 2000.
Hormon Tumbuhan. Rajawali, Jakarta.
Indradewa. D., 2009. Fisiologi
Tumbuhan. www.faperta.ugm.ac.id. Di akses pada tanggal 15
November 2010.
Jozep, 2002. Pengaruh
Urea Terhadap Pertumbuhan Biji. S Niaga Mas, Surabaya.
June T., 2008. Kenaikan CO2 dan Perubahan Iklim :
Implikasinya Terhadap Pertumbuhan Tanaman. http://members.tripod.com. Di akses pada tanggal 16 Nopember
2010.
Kadir, 2007. Indole
Acetic-Acid (IAA). Gramedia,
Surabaya.
Kristio, 2009. Tanaman
Obat Indonesia. http://www.warintek.ristek.go.id. Di akses pada tanggal 15 November 2010.
Lakitan B., 2004.
Dasar-Dasar Fisiologi
Tumbuhan. Raja Grafindo
Persada,
Jakarta.
Mulyani, 2000. Anatomi
Tumbuhan. Kanisius, Yogyakarta.
14
November 2010.
Mukhtarom,
2009. Fungsi Auksin. http://mukhtarom-ali.blogspot.com. Diakses pada tanggal 19 November 2010.
Plantamor, 2008. Sosongkokan (Rhoeo discolor). http://www.plantamor.com. Di akses pada
tanggal 14 November 2010.
Purwanti,
Devi. 2007. Pengaruh Emisi Gas Buang
Kendaraan Bermotor Terhadap Struktur Epidermis dan Stomata Daun Tanaman
Pelindung Di Jalan Adi Sumarno Sampai Terminal Tirtonadi Surakarta.
Fakultas Keguruan dan Ilmu Pendidikan Universitas Muhammadiyah, Surakarta.
Rukmana R., 2005. Usaha
Tani Jagung. Kanisius, Yogyakarta.
Rioardi, 2009. Air
Dalam Tumbuhan. http:// WordPress.com. Di akses pada tanggal 14 November 2009.
Saleh, M.S.,
2003. Asam Indole Acetic Acid.
Surya Indah, Magelang.
Suwasono, 1983. Pengaruh
Auksin Terhadap Pertumbuhan. Mina
Raharja, Bandung.
Salisbury, D., 1995. Fisiologi Tumbuhan jilid 1 edisi IV. ITB, Bandung.
Sukamto, 2007. Kamus Pertanian. Aneka Ilmu, Semarang.
Salisbury FB,
Ross CW. 1992. Fisiologi Tumbuhan Jilid 2.
Institut Teknologi, Bandung.
Theo, 2007. Morfologi Tanaman kakao. http://afandypoltek.wordpress.com. (diakses pada tanggal 13
November 2010).
, 2009. Klorofil
pada Cacao. http//id.wikipedia.org. Diakses pada tanggal 14 November 2010.
Wuryan, 2009. Daya
Kecambah Indeks Vigor. http://wuryan.wordpress.com. Diakses pada
tanggal 28 November 2010.
RIWAYAT
HIDUP
izin copas bro... jaln2 ke blog ana..
BalasHapus